PRST-050
PRACTICO Nº 1
PRINCIPALES GRUPOS DE IMPORTANCIA MEDICA
Ciclo directo
Ciclo indirecto
Ciclo de Taenia solium
Artropodos:
Metamorfosis
Protozoos: Quistes de Entamoeba
Protozoos:Trofozoito de
Entamoeba
Protozoos: Trypanosoma cruzi
Nematodos: Adultos de Ascaris
Nematodos: Huevos de Ascaris
Cestodo: Adulto
Cestodos: Estadios juveniles
Trematodos: Adulto de Fasciola hepatica
Artropodos:Adulto de Pediculus
Artropodos: Arañas- Loxosceles laeta
PRST-050-Laboratorio Nº1
DIAGNOSTICO COPROPARASITOLOGICO
1-Por su ubicación intestinal y su sintomatología
polimorfa y no patognomónica, es necesario el
diagnostico diferencial y la confirmación del agente
etiológico.
2-Por ser generalmente cuadros crónicos, la mejoría
clínica, no es criterio suficiente de curación, debe
realizarse control.
3-El diagnostico de certeza de las infecciones
intestinales solo puede ser confirmado mediante el
examen de deposiciones
1-Confirmación parasitológica del agente causal de la
infección mediante un método directo.
.
5-El examen de deposiciones debe aplicarse en forma
seriada, con el fin de lograr mayor rendimiento.
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METODOS DE DIAGNÓSTICO
Métodos directos:
Métodos indirectos:
TECNICAS DE CONCENTRACION
Por flotación
Por sedimentación
TECNICAS DE CONCENTRACION
Básicamente el objetivo es lograr un aumento
significativo en el rendimiento diagnostico.
Esto se consigue a través de:
-Aumentar el numero de elementos parasitarios por
preparación.
-Presentar los elementos parasitarios sin o con escasa
alteración.
-Eliminar los elementos que dificulten la visualización
de las formas diagnosticas: restos vegetales , glóbulos
grasos, etc.
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Laboratorio Nº1
REQUISITOS PARA LA RECOLECCION DE MUESTRAS PARA UN
COPROPARASITOLOGICO
1-Muestras recién emitidas.
2-Muestras debidamente identificada y en lo posible con hipótesis de
diagnostico.
3-Recogida en un recipiente limpio, seco, sin mezclarse con orina.
4-Del tamaño de una nuez, en un envase de vidrio o plástico.
5-No debe utilizarse envases de cartón papel o madera.
6-Las deposiciones de pacientes en tratamiento con bario, bismuto,
antibióticos, purgantes oleosos, o medicamentos específicos no son
satisfactorias. Deberían realizarse antes de dichos fármacos o
después de 1 semana de haberlos usado.
7-El frasco deberá contener aprox. 15 ml de fijador, y la muestra
deberá quedar totalmente cubierta por este.
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Laboratorio Nº1
Para examen seriado de excrementos el
Laboratorio de Referencia del Instituto de Salud
Pública recomienda 3 muestras recolectadas 1 día
por medio.
-Los nematodos se envían al laboratorio en alcohol
de 70% o en Nacl 0.15 M
-Los cestodos se dejan en agua a 4º C (con las
respectivas precauciones) y después de 10 hr fijar
en solución de formalina al 10%. Si el laboratorio
se encuentra en el mismo hospital los
especimenes pueden ser enviados en agua en un
recipiente cerrado.
METODO DE GRAHAM
REQUISITOS PARA LA TOMA DE MUESTRA:
-La toma de muestra no debe ser tomada por el mismo
paciente.
-Se debe tomar en la mañana al despertar.
-Antes de practicarse el aseo.
-Antes de defecar y orinar.
-No debe utilizarse pomadas o talcos en la región anal la
noche anterior.
RENDIMIENTO:
Al examinar 7 muestras es posible diagnosticar el 94% de los
casos.
Al examinar 5 muestras es posible diagnosticar el 90.1% de
los casos.
Al examinar 3 muestras es posible diagnosticar el 81.7% de
los casos.
METODO DE GRAHAM
• PROCEDIMIENTO
• Colocar al paciente de cúbito dorsal, con la ropa
interior abajo de las rodillas. El examen debe ser
practicado por dos personas, una abre los glúteos y la
otra aplica la cinta engomada.
• En el momento de usar, se desprende la cinta del
portaobjetos por el extremo doblado y se aplica por el
lado engomado en la región perianal y en los pliegues
interglúteos. Posteriormente se adhiere nuevamente
la cinta al portaobjetos.
• Envolver en un trozo de papel con los datos del
paciente: nombre, edad, procedencia, fecha.
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