FITOPATOLOGÍA
EN CAÑA DE AZÚCAR:
CONCEPTOS
Y DEFINICIONES
ENFERMEDAD / Concepto
Alteración desfavorable del desarrollo
fisiológico y/o morfológico, originada
por un agente extraño, que da lugar a
manifestaciones visibles no comunes y
afecta la cantidad y calidad de la
cosecha.
ENFERMEDADES /SÌNTOMAS
Alteraciones o modificaciones fisiológicas y/o
anatómicas, que se manifiestan en el interior
y exterior de la planta, como resultado de su
interacción con un agente extraño.
SIGNOS
Manifestaciones o aparición de
estructuras o componentes del
agente parasitario sobre los tejidos
afectados de una planta enferma.
TIPOS DE SÍNTOMAS
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
Necrosis
Podredumbres
Antracnosis
Marchitez vascular
Marchitez de las posturas
Muerte regresiva
Cancer
Metaplasias, hiperplasias, hipertrofias, hipoplasias
Tumores, costra, escoba de bruja
Nódulos o agallas, enrollamiento
Clorosis, enanismo o achaparramiento
METAPLASIAS
Cambios o modificaciones de carácter
progresivo en una célula o en un tejido,
que no tiene relación ni con la división
ni con el crecimiento celular.
Son variaciones en el contenido de la
célula, tales como formación de
pigmentos, engrosamiento de la pared
celular, suberificación o lignificación de
tejidos.
HIPERPLASIA
Aumento de volumen de los tejidos de
la planta debido a una multiplicación
anormal de las células. Las
manifestaciones más frecuentes de esta
anomalía parasitaria son:
Tumores
Costra
 Escoba de bruja
Nódulos o agallas
Enrollamiento
HIPERTROFÍA
Crecimiento excesivo de tejido debido al
aumento de volumen o tamaño de la
célula, que trae como consecuencia la
aparición de estructuras engrandecidas o
anormales.
Generalmente ocurre de forma simultànea
con la hiperplasia.
HIPOPLASIA
Desarrollo incompleto o ausencia
total de desarrollo de un órgano o
parte de la planta, que se manifiesta
después del ataque de un parásito.
AGENTES CAUSALES
DE ENF. EN C/A
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
Virus y semejantes
Bacterias
Fitoplasmas
Hongos
Plantas parásitas
Trastornos ambientales
Trastornos indeterminados
Daños mecánicos
VIRUS
Conjunto de instrucciones contenidas en un
segmento de ácido nucleico, encapsuladas por
una estructura proteica y contiene lípidos y otras
sustancias.
PARTICULA VIRAL
Unidad morfológica reconocible en el ME y por
análisis biofísicos, que representan la fase latente
del ciclo de multiplicación viral.
Se integra a la maquinaria celular de la planta
alterando su metabolismo y suministra las
instrucciones para la síntesis de nuevas
partículas virales.
VIRUS. Efectos y acciones en la planta
Efectos sobre:
Ácidos nucleicos
Respiración
Fotosíntesis
Transpiración
Contenido de agua
Acción sobre:
•Proteínas
•Actividades enzimáticas
•Carbohidratos
•Pigmentos
•Reguladores del crecimiento
TRANSMISIÓN DE LOS
VIRUS
Mecánica
Semilla
Insectos
Ácaros
Nemátodos
Hongos
Fanerógamas parásitas
El suelo
BACTERIA
Organismo unicelular microscópico que se
reproduce por fusión binaria o bipartición y
no tiene núcleo definido.
La célula bacteriana realiza todas las
funciones biológicas de una planta inferior y
la mayoría de las especies poseen
locomoción por medio de flagelos.
Entre los géneros de bacterias
fitopatógenas, Pseudomonas, Xanthomonas
y Leifsonia son las más importantes en la
patología de la caña de azúcar.
FITOPLASMAS
Células más pequeñas con capacidad de
multiplicación de forma independiente.
Presentan membrana celular con 3 capas.
Viven confinados al floema de las plantas.
Pueden causar enanismo, anormalidades florales,
proliferación de los brotes, necrosis del floema,
amarilleamiento de la hojas y muerte de la planta.
Son procariotas de la clase Mollicutes que no
crecen sobre medios artificiales.
Para su detección se emplea hibridaciòn de ADN,
PCR,RFLP y otras tècnicas.
HONGOS
 Organismos heterótrofos, saprófitos o parásitos que
ocasionan daños por sustracción de sustancias
nutritivas o por la producción de toxinas,que causan
al hospedante trastornos del proceso fisiológico, el
crecimiento y el desarrollo.
 Su cuerpo es unicelular o pluricelular, con células
uninucleadas o plurinucleadas, cubiertas por una
membrana celulósica formada por micosina.
 Las células fungosas se les conoce como “hifas” y
al conjunto de hifas se le denomina “micelio”, que
constituye el cuerpo vegetativo de los hongos y
puede adoptar diferentes formas para adaptarse al
sustrato.
NEMÁTODOS
Grupo más numeroso de animales multicelulares,
presentes en casi todos los nichos ecológicos: desiertos,
fondo de los océanos y los hielos polares.
La mayoría de los fitoparásitos vermiformes con longitud
promedio de 1mm; algunos miden 0.3mm y otros pueden
alcanzar hasta 10mm.
Poseen sexos separados, dimorfismo sexual poco
destacado; los machos tienen cola de forma diferente, un
solo testículo y espículas copulatorias situadas en la
cloaca.
Los fitoparásitos pinchan las células con un estilete
bucal, a través del cual exudan un fluido salival que en
ocasiones produce efecto tóxico o modificador del
crecimiento.
AGENTES NO PARASITARIOS/DAÑOS
 Traumatismos o daños mecánicos
 Temperatura
 Humedad
 Relaciones inadecuadas de luz
 Relaciones inadecuadas de oxígeno
 Daños por plaguicidas
 Condiciones químicas desfavorables del suelo
-Deficiencias minerales
-Toxicidad
-Acidez y alcalinidad
-Salinidad
 Heredopatología o trastornos genéticos
OPERACIONES
CULTURALES/DAÑOS
Por desconocimiento o descuido de obreros agrícolas y operadores de
maquinarias:
Afectaciones del sistema foliar por calor intenso durante la quema
de la caña.
Destrucción o magulladuras de las plantas por empleo de máquinas
inadecuadas o mal manejadas.
Daños por implementos inapropiados o mal regulados.
Manchado y quemazón de las hojas por contacto con aceite de los
tractores y grasa de los implementos.
Efecto fitotóxico por herbicidas inadecuados o mal aplicados.
Muerte por asfixia de las plantas debido a inundaciones de los
campos por falta de drenaje.
Rebrote deficiente por dejar tocones debido al corte alto en la
ENFERMEDADES/ CAÑA de azúcar en
México
Origen parasitario: 22
 Hongos-17
 Bacterias-3
 Fitoplasmas-1
 Virus-1
Origen no parasitario: 25
 Factores ambientales-9
 Deficiencias de elementos-8
 Por diversos factores-8
ENFERMEDADES MX/Parasitarias (I)
 Virus:
Mosaico
 Fitopalsma:
Síndorme de la hoja amarilla
 Bacterias:
Escaldadura foliar
Raquitismo de los retoños
Raya roja bacteriana
ENFERMEDADES MX/ (II)
• Hongos:
Damping off
Enfermedad corteza
Enfermedad piña
Fumagina
Mancha anular
Mancha de ojo
Mancha parda
Mancha roja vaina
Marchitez
Pokkah boeng
Pudrición base, raíz y vaina
Pudrición vaina
Pudrición roja vaina
Pudrición sistema radical
Pudrición roja tallo
Carbón tallo
Raya común
ENFERMEDADES MX / Factores
ambientales (9)
Bajas temperaturas: banda clorótica, daños
por frío, heladas.
Daños por viento: quemadura, mecánicos
Daños por sequía
Daños por ciclones
Daños por rayos
Por mal drenaje interno
ENFERMEDADES MX / Malas labores y
deficiencias (16)
 Malas labores de cultivo: quema, daños por herbicidas,
maduradores.
 Deficiencias de elementos: N, P, K, Ca, S, Fe, Mn.
 Anomalìas por diversos factores:
Albinismo
Agallas del tallo
Necrosis interna del tallo
Proliferación de los brotes
Escoba de bruja
Machetazo
ENFERMEDADES PRINCIPALES/México
 Virus:
Mosaico (1935)
 Fitoplasma:
Síndrome de la hoja amarilla (YLS), 1996.
 Bacterias:
Raquitismo de las socas (1955)
Escaldadura de la hoja (1992)
 Hongos:
Roya común (1979)
Carbón (1980)
MOSAICO/Antecedentes
 Descubierto por Musschenbroek en Java en el año 1892.
 Introducido al Continente Americano en variedades
procedentes Java, vía Argentina en 1916, extendiéndose a
Cuba, Puerto Rico, EUA; causando grandes daños.
 En la década del 30 fue necesario introducir variedades
resistentes a la región para controlar la enfermedad como
POJ2878, POJ2714.
 El primer reporte en México fue realizado por Dampf en
1929, que lo detectó en El Potrero, Ver.
 En 1946 Matz encontró la enfermedad en los alrededores de
Córdova, Ver. sobre Co290, Rayada, Morada y Cristalina.
 En 1947 Ontiveros informó que más del 80% de las áreas del
ingenio Independencia, Ver. plantadas con variedades criollas
presentaban la enfermedad.
MOSAICO/ Síntomas
 Debido a la interferencia del VMCA en la formación de la
clorofila, los tejidos de las hojas jóvenes presentan manchas
irregulares o rayas amarillentas sobre fondo verde normal.
 Los síntomas son más visibles en plantas con crecimiento
activo y tanto la propagación como el tono amarillo varían
en dependencia de la variedad de caña, raza del virus y
condiciones ambientales.
 Pueden presentarse reacciones de color rojizo hasta la
necrosis parcial o total del tejido foliar; síntomas en la
epidermis del tallo y malformaciones en los entrenudos.
 Achaparramiento de los tallos, cepas y campos completos,
que pueden originar pérdidas significativas de la cosecha.
RAZAS VMCA/AMÉRICA/Flores, 1997
Argentina B
Brasil
A, B, J
Colombia A, B, D
Cuba
A, B, D
E.U.A
A, B, C, D, E, F, G, H, I, J, K, L, M,
Jamaica B
México
B, D
P. Rico A, B, D
R. Dominicana A, B, D
Uruguay A, B
Venezuela B, D, J
MOSAICO/Propagación en México
 En 1948 Chilton inspeccionó todas las regiones cañeras: en
Mahuixtlan, Co290 presentaba el 90%, ingenio
Independencia, Ver. 20%; Co281 en los ingenios de Yucatán
100%; Cuatotolapan, POJ36 más de 25% y San Cristóbal,
Co213 con más del 40%.
 En 1949-51 Flores identificó la enfermedad en todas las
regiones cañeras, excepto Sinaloa, lo cual obligó a introducir
variedades resistentes y crear la estación de hibridación.
 Todavía en la década del 60 estaba ampliamente propagado
porque se cultivaban Co213, Co281, Co290, POMEX72 y
otras.
 Actualmente el mosaico se considera una enfermedad de
importancia potencial en México.
VMCA/Métodos de transmisión mecánica
 Introducción del inóculo cerca del punto de crecimiento
con jeringuilla hipodérmica.
 Colocar una hoja enferma sobre otra perteneciente a una
planta sana y ocasionarle heridas con una aguja.
 Untar el jugo infeccioso sobre las hojas de plantas sanas y
pincharlas repetidamente con una aguja.
 Colocar el inóculo en el “spindle” con un gotero y pinchar
el área humedecida varias veces con una aguja fina.
 Aplicar el jugo infeccioso mezclado con un abrasivo sobre
las hojas y frotarlas vigorosamente con un pedazo de tela.
 Aplicar el jugo infeccioso mezclado con un abrasivo
mediante una pistola de aire.
MOSAICO/Medidas de combate
 Entresaque de cepas enfermas.
 Empleo de semilla sana en las plantaciones nuevas.
 Plantación de variedades resistentes.
 Mantener composición varietal adecuada.
 Tratamiento hidrotérmico de los propágulos.
 Cultivo de yemas tratadas previamente con HTT.
 Cultivo de meristemos combinado con HTT.
 Empleo de mecanismos de escape de los vectores.
YLS/Síntomas
 Coloración amarilla brillante del raquis, por el envés de
la hoja, que se extiende hacia los limbos y puede ocupar
toda la superficie foliar. Aumento considerable del brix
de la nervadura.
 Disminución de la altura y grosor de los tallos que
produce achaparramiento de las cepas, forma focos al
principio y después se generaliza en el campo.
 Necrosis y destrucción del sistema radical, las cepas
pueden arrancarse fácilmente.
 Coloración pardo-clara de los tejidos internos del tallo,
que oscurece a medida que aumenta la descomposición.
 Muerte de tallos y cepas, que puede acelerarse por la
invasión de microorganismos e insectos oportunistas.
YLS/Antecedentes
Reportada por primera vez en Hawaii por Schenck y Hu
en 1989.
En 1991 observada por Fors en Venezuela, afectando la
variedad PR69-2176.
Durante 1991-92 apareció en Brasil sobre SP71-6163,
altamente susceptible (Ulian y Sanguino).
En 1994 detectada por Comstock et al. en EUA (Florida,
Louisiana y Texas).
En México fue observada por Marín Sánchez et al. en
1996 sobre CP72-2086 en la Margarita, Oax.
También está presente en Argentina, Australia,
Colombia, Cuba, Ecuador, Mauricio, El Salvaador,
Honduras, Sudáfrica y otros países.
YLS/Propagación en México

Muestreos realizados por el Dr. Flores
Cáceres a finales de 1996 revelaron su
presencia en:
Áreas cañeras de Jalapa, Córdoba, Cuitlahuac
y tres Valles, Ver. sobre CP72-2086.
Plantaciones de esta misma variedad en
Quesería, Col.
Los Mochis, Sin. sobre Mex57-473 y en
Huixtla, Chis. afectando a la CP72-2086.
Luteovirus con dimensiones de 25-29 nm
YLS/Condiciones que estimulan su
desarrollo
Las observaciones realizadas en varios países
ponen de manifiesto que diferentes
condiciones ambientales estimulan el
desarrollo de la enfermedad. Las más
importantes son:
• Estrés por sequía
• Encharcamiento prolongado
• Temperaturas bajas
YLS/Diagnóstico por síntomas
foliares y brix
 Coloración del raquis por el envés de la hoja?
 La coloración se extiende a las láminas foliares?
 Se presenta en el raquis por el haz de la hoja?
 Necrosis foliar parcial o generalizada?
 Valores del brix refractométrico en el raquis?
 Necrosis interna del tallo?
 Destrucción del sistema radical?
 Muerte de tallos, cepas y campos completos?
Variedades afectadas /Países
Brasil: SP71-6163,SP71-1406, SP71-6180.
 Colombia: CC84-75, CC87-434, CC85-96, V71-51.
 Cuba: C87-51, C1051-73, C120-78.
 Ecuador: B7316
 El Salvador: CP72-1210, PR68-3120, PR77-3313, PR872084.
 Florida (EUA): CP72-1210, CP81-2149, CP88-769.
 Guatemala: SP70-1284, CP72-2086, CP72-1210.
 Mauricio: M292/70, M695/69, Q72, CP72-1210.
 México:CP72-2086, Mex57-473, CP72-1210, Co997.
 Puerto Rico: PR69-2176.
 Texas (EUA): CP86-1644, CP87-1733.
 Venezuela: V71-51, PR 69-2176.
YLS/Importancia económica
 Amplio perfil de ataque, afecta severamente a numerosas
variedades con diferente composición genética y origen
geográfico.
 Reportada sobre diferentes especies de Saccharum, híbridos en
diferentes estadios y variedades comerciales en diferentes
latitudes.
 Las plantas enfermas disminuyen su crecimiento; la necrosis de las
hojas afecta la fotosíntesis; la destrucción del sistema radical, la
absorción y anclaje.
 La desnaturalización de los tejidos internos del tallo obstaculiza el
almacenamiento y afecta los componentes del rendimiento
azucarero.
 Los daños más severos han sido reportados en Brasil, donde se
estimaron pérdidas de 40-70% del rendimiento de campo y
fábrica.
YLS/ESCALA
1. No se observan síntomas.
2. Coloración amarilla en el raquis, que puede
abrirse hacia las láminas foliares, brix
refractométrico del raquis > 7< 14.
3. La coloración amarilla ocupa todo el follaje,
se observa necrosis de las hojas del ápice
hacia abajo; brix > 14.
4. La coloración amarilla ocupa todo el follaje,
la necrosis se extiende hacia el interior del
tallo y al sistema radical; pueden morir
varias plantas y cepas completas, brix > 14.
RAYA ROJA
 Organismo causal: Pseudomonas rubrilineans
 Originalmente observada por Lyon en Hawaii (1922); en 1923
aparece en Australia; 1927 en Java, Cuba, EUA y otros países.
 En México fue reportada por Chilton (1953) en varias zonas
del país sobre Co213, 281 y 290.
 En 1970-71 atacó B4362 en Tuxtepec, Oax., donde causó la
muerte del 20% de los tallos, equivalente a 12 ton/h de caña.
 Se presenta ocasionalmente en manchones de 20-50m, en
terrenos bajos de mal drenaje, como los de la Región del
Papaluapan, Ver. y de la Chontalpa, Tab.
 También es frecuente en lugares a más de 1 350msnm cercanos
a los Reyes, Mich., Tamazula, Jal., Xalapa y Orizaba, Ver.,
donde se presentan muchos días nublados, con poca
luminosidad y alta HR.
RAYA ROJA/ Síntomas y signos
Presenta 2 fases: rayado de las hojas y pudrición del cogollo.
Rayado de las hojas:
 Rayas largas y estrechas con bordes bien definidos, coloración
desde verde aguanoso, amarillo rojizo hasta el rojo oscuro, que se
unen para formar bandas que llegan hasta el cuello de la hoja.
 En presencia de alta humedad relativa y temperatura favorable,
brota por los estomas exudado bacteriano blanquecino, que
constituye el medio de propagación de la enfermedad.
Pudrición del cogollo:
 Es la fase más destructiva, porque muere el punto de crecimiento,
brotan las yemas laterales y la pudrición desciende hacia la base
del tallo; se desprende un olor fétido característico que contribuye
al diagnóstico.
RAYA ROJA / Transmisión
 Las bacterias son acarreadas de planta a planta y
de campo a campo por el viento y la lluvia.
 El exudado bacteriano forma pequeñas gotas en la
superficie de las lesiones de las hojas, durante los
períodos húmedos y calientes.
 La infección de las hojas tiene lugar a través de los
estomas; las bacterias destruyen el contenido de
las células, debilita sus paredes, lo cual afecta el
proceso fisiológico.
 Los aperos de labranza, el machete cañero y los
animales no tienen importancia para propagar la
enfermedad.
R.ROJA/Medidas de combate
 Plantación de variedades resistentes.
 Mantener una composición varietal adecuada,
acorde con los principios fitopatológicos.
 Voltear la caña enferma lo antes posible y
nivelar el terreno.
 Emplear semilla sana en las plantaciones de
fomento.
 Reducir las dosis de N, procurando no poner
más del equivalente a 100 kg/ha.
 Sembrar en terrenos altos, bien aireados,
retirados de las faldas de las montañas y menos
de 1 000 msnm.
Escaldadura foliar
Características
Bacteria confinada a los haces vasculares.
Presenta forma de bastoncillo con un
flagelo polar.
Dimensiones 0.25-0.3 x 0.6-1.0 micrómetro.
Colonias de color amarillo pálido.
Puede aislarse fácilmente sobre medio
Wilbrink.
HISTORIA Y DISTRIBUCIÓN
 Reportada por primera vez en Indonesia, en 1920.
 Durante varios años se propagó a diferentes
regiones del Mundo.
 Ha causado la “proscripción” de numerosas
variedades de caña en diferentes países.
 Se encuentra presente en más de 40 países cañeros.
 Su presencia ha aumentado la complejidad de la
obtención de nuevas variedades.
FASE CRÓNICA
 Rayas blancas estrechas a lo largo de la hoja y
en la vaina.
 Ensanchamiento de las rayas, necrosis y
pérdida de turgencia del tejido foliar, del ápice
hacia abajo.
 Blanqueamiento parcial o total del cogollo, que
se manifiesta a medida que progresa la
enfermedad.
 Formación profusa de brotes laterales, con los
mismos síntomas que ocurren en las hojas.
 Al rajar longitudinalmente los tallos se observa
una coloración rojiza en los haces vasculares,
más evidente en la región nodal y en el punto de
unión de los brotes laterales.
FASE AGUDA
Marchitamiento y muerte súbita de las plantas,
como afectadas por la sequía, en algunos o en
todos los tallos de una cepa.
La enfermedad se manifiesta cuando coincide
la temporada de sequía con la madurez de los
tallos.
Las bacterias se desarrollan rápidamente
dentro del sistema vascular y “taponean” los
haces, limitando la absorción y conducción de
agua y nutrientes.
En casos severos, toda la población del campo
muestra manchones con plantas marchitas y
muertas.
FASE DE LATENCIA
 Se presenta en variedades tolerantes, que
conviven con el organismo causal durante años
sin manifestar síntomas externos.
 Las plantaciones infectadas no presentan
síntomas durante un largo período.
 El estado de “latencia” se rompe por estrés
climático o nutricional que desencadena el
desarrollo de la enfermedad.
FASE DE ECLIPSE
Durante el crecimiento de la planta,
aparecen y desaparecen líneas blancas
foliares, que dejan de ser visibles
después de la senescencia y muerte de
las hojas viejas.
En las hojas jóvenes no se manifiesta
ningún síntoma de la enfermedad.
Una misma planta puede ser registrada
como enferma o sana, en dependencia
del momento de la inspección.
Importancia económica
Retrasa el desarrollo de los tallos.
Disminuye el número de tallos molibles por
cepa.
Retrasa el rebrote y el crecimiento de los pelillos
(retoños de socas).
En resumen, afecta el rendimiento agrícola.
La fase aguda puede matar más del 10% de los
tallos en las variedades susceptibles.
También afecta la calidad del jugo, reduciendo
el brix, pol y pureza, en relación con el
porcentaje de tallos enfermos.
Escala de incidencia
1. No se observan síntomas.
2. Rayas blancas “tipo lápiz” en una o varias hojas.
3. Blanqueamiento generalizado en el follaje,
principalmente en hojas más jóvenes y desarrollo
profuso de brotes laterales, que muestran síntomas
en el cogollo del tallo principal.
4. Blanqueamiento en el follaje, brotes laterales,
necrosis de los haces fibrovasculares del tallo, más
aparente en los nudos; muerte de varias plantas y
cepas.
Medidas de combate
 Empleo de variedades resistentes.
 Mantener composición varietal adecuada.
 Aplicar hidrotermoterapia con remojado
previo.
 Utilizar semilla categorizada con
inspecciones rigurosas en todos los
eslabones.
 Saneamiento de las enfermas y desinfección.
Raquitismo de los retoños:
Leifsonia xyli subsp.xyli
Características
e importancia
RSD/Antecedentes
 Descubierta en Australia por Steindl en 1945 sobre Q28.
 Se pensaba que era causada por virus, pero Teakle y Gillaspie
(1974) definieron que se trataba de una bacteria.
 En México fue reportada por Abbott en 1953 sobre POJ2878,
ingenio Los Mochis, Sin. y en más de 50 variedades de la Estación
de Hibridación de Tapachula, Chis.
 Los técnicos del ITAV en 1957 la encontraron en la mayoría de las
variedades de Bancos y Jardines en San Cristóbal, Ver.
 Steib la identificó en El Portero, Ver. y Fors en La Joya, Camp.
 En 1960 Flores confirmó su existencia en casi todas las variedades
existentes en los ingenios mexicanos: Co213, 290, 419, 421,
NCo310, ML3-18, POJ2878, Mex52-29, 59-32, CP39-105 y otras.
 Después de 40 años, sin aplicación de combate, el RSD se
encuentra propagado en todas las zonas cañeras del país.
Leifosonia x. x./Características
 Célula bacteriana recta o curvada, puede presentar
abultamientos.
 Polimorfismo: Unicelular, septada, filamentos ramificados.
 Atrica, no motil, Gram positiva y no produce esporas.
 Dimensiones 0.25-0.30 x 1-4 y hasta 10 micrómetros.
 Retenida por filtros bacteriológicos de 0.22 micrómetros.
 Presenta un “mesosoma” característico de la especie.
 Crece satisfactoriamente sobre los medios SC y SC-M.
 Requiere 2-4 semanas de incubación aeróbica a 28ºC.
 Colonias 0.1-0.3mm de diámetro, circulares, convexas, no
pigmentadas.
 Forma parte del FFV del xilema, gomas, resinas y tilosas:
Produce “taponamiento”.
RSD. Síntomas
 Presencia de tallos raquíticos dentro de una cepa, cuyo
número aumenta con la cantidad de cortes del campo.
 Coloraciones rojo-naranja, en forma de puntos o rayas,
que aparecen en los haces fibrovasculares de la base de
los nudos, cuando la porción inferior de un tallo maduro
es seccionada longitudinalmente.
 Coloración rosada-salmón de los tejidos internos en los
canutos apicales de los brotes jóvenes.
 Los tallos enfermos son más delgados y más cortos,
como producto del acortamiento de los entrenudos, lo
cual se origina por la obstrucción de los vasos del
xilema por el organismo causal, las gomas, resinas y
tilosas.
RSD. Propagación a través de:
Propágulos procedentes de plantas enfermas.
Machete cañero durante picado de la semilla,
atenciones culturales y cosecha.
Cuchillas de las combinadas en la cosecha.
Implementos agrícolas durante la limpia,
aporque y fertilización.
Ratones, ganado vacuno y caballar, así como
otros animales.
RSD/Diagnóstico/Técnicas
Síntomas juveniles en caña.
Síntomas en cañas maduras.
Inoculación en plantas indicadoras.
Microscopía por contraste de fases.
Microscopía de campo oscuro.
Inmunofluorescencia indirecta (IFI).
Dot blot.
Inmunomicroscopía electrónica.
Tinción por transpiración (STM).
RSD/Pérdidas/México
 Flores Cáseras(1997) señala que los daños fluctúan entre
5 y 10% del rendimiento promedio de campo.
 Considerando la producción de México alrededor de 70
ton caña/ha, las pérdidas serian de 3.5 a 7.0 ton caña/ha.
 En años de extrema sequía, dichas cifras pueden alcanzar
hasta 30%, equivalente según el ejemplo anterior a
21ton/ha de pérdidas en terrenos de temporal.
 Estas cifras pudieran ser mayores en presencia de
variedades susceptibles, a medida que aumenta el
número de cosechas de la plantación, en suelos de baja
fertilidad y con malas atenciones agrotécnicas.
FUNGOSAS/DAMPING OFF/Antecedentes
 También se conoce como pudrición de las posturas, pudrición del tronco
de las plántulas, ahogamiento o secadera de los almácigos.
 Organismo causal: Pythium spp., Rhzoctonia spp.
 Causa la pudrición del sistema radical de las plántulas de caña de azúcar
que se obtienen por mejoramiento genético.
 Constituye un serio problema en la Estación de Hibridación de
Tapachula, Chis. y en diferentes programas de M. genético a nivel
mundial.
 El complejo de hongos afecta la germinación de la semilla botánica; en
ocasiones puede llegar hasta 50% de la población de plàntulas, que en el
caso de México representa 500 000 menos.
 Se considera un riesgo potencial hasta los 3 meses, debido a alta
densidad de población, el exceso de humedad en invernadero-vivero y la
sombra de protección que reciben las plàntulas.
DAMPING OFF/Síntomas
 En el semillero de caña pueden distinguirse 2 tipos de
síntomas: fallas en la germinación y muerte de las plántulas.
 Fallas en la germinación: Se producen debido a que
muchas semillas se pudren por efecto del complejo de
hongos del suelo y los hongos que forman parte de la
micoflora de la semilla botánica.
 Muerte de las plántulas: Muchas plantitas recién emergidas
del suelo se marchitan debido a la pudrición del cuello y la
raíz.
 Las condiciones que favorecen el desarrollo de la
enfermedad: temperatura de 12 a 30ºC durante las 24 horas
del día y HR 90-100%.
DAMPING OFF/Medidas de lucha
 Preparar el sustrato para el semillero con una parte de
compost, otra de arena y 2 de tierra.
 Antes de llenar las cajas germinadoras se desinfecta el
sustrato con un fungicida apropiado o se esteriliza en
autoclave.
 También se puede aplicar una parte de formol 37% con 50
partes de agua en la proporción de 17L por m³.
 Se cubre el montón de sustrato con una capa de lona o
polietileno y se llenan las orillas con tierra húmeda para
evitar escape de gas.
 A partir de la segunda semana y durante el tiempo que
permanezcan las plántulas en las cajas germinadoras, se
tratarán 2 veces por semana con fungicida apropiado.
EFERMEDA DE LA
CORTEZA/Características
 Organismo causal: Phaeocytostroma (Pleocyta) sacchari.
 Descrita por primera vez en Puerto Rico por Johnston en
1917; aunque los síntomas habían sido observados con
anterioridad.
 Síntomas: Masas de cuerpos fructíferos en forma de pelos
enrollados que salen de pústulas que se abren en la superficie
de la corteza de los tallos afectados.
 Las cañas debilitadas por la sequía, daños de insectos, sobremaduras, con daños mecánicos, son atacadas por la
enfermedad.
 Los tejidos internos del tallo adquieren un color oscuro y olor
agrio. Las hojas y vainas pueden ser afectadas tomando un
color amarillo y se secan. Sobre ellas también aparecen las
estructuras del hongo en forma de pelos enrollados.
ENFERMEDAD DE LA
CORTEZA/Características del o. causal
• Puede ser aislado sobre varios medios de cultivo y produce
micelio gris oscuro.
• Esporas unicelulares, cilíndricas, extremos redondeados y de
color pardo claro, con dimensiones 10-15 x 3-4 micrómetros.
• Usualmente cada célula posee una vacuola cerca de cada
extremo.
• En condiciones de humedad se producen en las pústulas
grandes masas de esporas voluminosas que se abren
rompiendo la epidermis, incapaces de infectar las cañas
sanas.
• Puede causar reducción de la germinación cuando ataca a los
propágulos que sufren deterioro después de la plantación y
no recibieron tratamiento térmico y químico previamente.
ENF. de la PIÑA/ Antecedentes
 Organismo causal: Ceratocystis (Thielaviopsis) paradoxa.
 Conocida también como corazón negro o guacatillo, fue
originalmente estudiada por De Seynes en Francia (1886).
 Durante la descomposición de los tejidos de los trozos de semilla se
desprende un olor característico semejante a la piña (acetato etílico
producido por el hongo), días después de plantada la caña.
 Generalmente no se desarrolla en las plantas en pie, sino cuando la
estaca ha sido plantada, a menos que hayan sido atacadas por los
insectos, roedores o dañadas mecánicamente.
 Los mayores daños se producen cuando los propágulos permanecen
enterrados, con falta de humedad, de calor y se retrasa la brotación.
Entonces el hongo penetra por los extremos y se propaga por los
tejidos.
 La parte afectada enrojece, se desintegra y toma color negro; la
estaca puede podrirse antes de brotar las yemas o morir los brotes
jóvenes.
ENFERMEDAD DE LA
PIÑA/Características del ataque
 El hongo produce 2 tipos de esporas: conidios y clamidosporas,
que trasmiten la enfermedad en el suelo y por las estacas infectadas.
 Las temperaturas bajas del suelo en invierno, las condiciones de
excesiva humedad, intensa sequía o plantación muy profunda y tape
con mucha tierra, producen retraso de la brotación, lo cual provoca
el desarrollo de la enfermedad.
 El patógeno puede ser controlado de forma preventiva sumergiendo
los propágulos después de la HTT en una solución mercurial,
benomyl, agallol, u otro fungicida apropiado.
 También se pueden tirar los propágulos en el fondo del surco,
asperjarlos con el fungicida y taparlos adecuadamente para
garantizar una brotación rápida.
FUMAGINA/Características
 Descubierta por Butler en la India (1906) y causa daños en
muchos países cañeros.
 Organismo causal: Fumago sacchari, Capnodium spp.
 Además de la caña, se presenta sobre cítricos, rosales, plantas
ornamentales y otras, atacadas por áfidos (pulgones) y
cicadélidos (chicharritas).
 En caña de azúcar se originan por la acción combinada del
saltahojas antillano Saccharosydne saccharivora y de los
hongos Fumago y Capnodium.
 En la zona de abastecimiento de los ingenios de SLP y
Tamaulipas constituye un serio problema porque anualmente
ataca más de 10 mil ha de caña.
 Para su control se recomienda: lucha biológica contra el insecto,
ampliar el ancho de surcada a 1.40m, limpiar y cultivar
inmediatamente después de la cosecha y plantar variedades
rústicas de hoja angosta como Co997, SP70-1284, Mex68-P-23.
FUMAGINA / Síntomas y efectos
 A medida que aumenta la población de insectos (ninfas
y adultos), los campos de plantilla y socas menores de
3 meses se cubren de fumagina y secan las hojas.
 El color negro originado por una capa de micelio del
hongo sobre la superficie de hojas y vainas, llama la
atención de los cañeros.
 Durante la temporada de sequía (febrero-mayo), tiene
lugar la reproducción del saltahojas.
 La acción destructiva de los insectos y la proliferación
del hongo, que “taponea” los estomas de las hojas,
detiene el crecimiento de las plantas y mata los brotes
tiernos y retoños.
 Cuando el micelio cubre las láminas foliares por el haz
y envés, se obstruye la fotosíntesis, respiración y
transpiración de las plantas.
MANCHA ANULAR/Síntomas
Manchas foliares de color verde oscuro a pardo
rojizo; en ocasiones adquieren un color paja, con
bordes amarillentos, de forma oval alargada.
A medida que crecen las manchas se fusionan y
forman extensas áreas pardo rojizas que al
envejecer adquieren un margen oscuro.
La enfermedad se desarrolla, generalmente, en las
hojas más viejas con baja actividad fisiológica.
En presencia de variedades susceptibles y
condiciones ambientales favorables, puede afectar
las hojas jóvenes.
MANCHA DE OJO/Características
• Organismo causal: Bipolaris sacchari
• Síntomas: Diminutos puntos aguanosos que originan
manchas con centros rojizos, que se rodean por márgenes
de color amarillo, forma alargada y eje mayor paralelo al
raquis.
• Posteriormente se forman bandas anchas de color rojo
que se extienden hacia el ápice, toman el amarillo paja a
café-hígado, por destrucción de la clorofila.
• En variedades susceptibles puede ser destruido el huso y
las hojas más jóvenes, muere el punto de crecimiento y
brotan las yemas laterales.
• En 2 semanas los campos afectados pierden el color
verde y adquieren apariencia de haber sido quemados.
MANCHA DE OJO/Alta propagación
 En 1955 Osada y Ramírez informaron alta propagación sobre
variedades susceptibles Co290, Co421. Actualmente la más
susceptibles es Mex69-290.
 Entonces se presentaba en zonas altas y húmedas (más de 800
msnm) como Tamazula, Jal., Taretán Mich. Y Orizaba y La
Concepción, Ver.
 Sigue siendo un problema potencial en México:
La Mex69-290 se comporta susceptible en:
El Molino, Nay. S. Cristobal, Ver., San Nicolás, Ver.
Tamazula, Jal., H. Galeana, Tab., El Potrero, Ver.
L. Cárdenas, Mich. Pdte. B. Juárez, Tab. Motzorongo, Ver.
Santa Clara, Mich., Santa Rosalía,Tab. Mahuixtlán, Ver.
A. López Mateos, Oax., El Carmen, Ver., La Concepción, Ver.,
B. Domínguez, Chis.
MANCHA DE OJO/Transmisión e
importancia
 En presencia de nubosidad abundante, temperaturas bajas de los
meses de invierno y variedades susceptibles, puede desarrollarse
una epifitia.
 El viento transporta los conidios a grandes distancias y la
existencia de humedad sobre las hojas es el factor más
importante para su desarrollo.
 Ataca a un amplio espectro de variedades de caña y otros
hospedantes como Pennisetum purpureum, Cymbopogon
citratus, Sorghum halepense.
 A pesar de que su importancia es local, en los casos más severos
puede ocasionar pérdidas de 20-30% de la cosecha.
 Para su control se recomienda emplear variedades resistentes y es
necesario cosechar de inmediato las plantaciones afectadas.
MANCHA PARDA (CAFÉ)
/Antecedentes
 Organismo causal: Cercospora longipes.
 Descrita por Butler en la India (1906).
 Ha sido observada en numerosos países.
 En 1945 estaba presente en todas las regiones cañeras de
México sobre Co281 y Co290.
 Era abundante en los estados Jalisco, Michoacán y Veracruz.
 Posteriormente se extendió a Co419, Co421 y NCo310, en
zonas húmedas de Tamazula, Jal., Tepic, Nay., Los Reyes,
Mich., Orizaba y Jalapa, Ver., Cárdenas y Tacotalpa, Tab. y
Huixtla, Chis.
 Catalogada como una enfermedad menor.
MANCHA PARDA (CAFÉ)/Síntomas
 Pequeñas manchas en las hojas de forma oval alargada y
color café-rojizo, rodeadas por una estrecha banda
amarilla.
 Con el tiempo, el centro de las manchas más viejas se seca
y adquiere un color paja.
 Varias manchas pequeñas se unen para formar manchas
mayores, distribuidas sobre toda la superficie foliar y son
visibles por el haz y el envés.
 Al principio de la infección, las manchas aparecen en las
hojas viejas y las más atacadas dan la apariencia de estar
chamusqueadas.
 La intensidad y frecuencia del ataque están regidas por la
humedad relativa, nubosidad y altitud de los campos,
además de la susceptibilidad varietal.
MANCHA ROJA DE LA VAINA
Características
Organismo causal: Cercospora vaginae.
 Descrita por Kruger en Java (1890) y está presente en la mayoría
de los países cañeros.
 Se caracteriza por pequeñas manchas rojo-vino en las vainas, con
contornos bien delimitados del verde normal que las rodea.
 A medida que crecen las manchas, se vuelven de forma irregular y
confluentes, para cubrir finalmente casi toda la superficie de la
vaina.
 En el centro de las zonas de tejido afectado aparecen placas negras
de tamaño variable, donde se encuentran las fructificaciones del
hongo.
 A pesar de estar distribuida en todas las zonas cañeras del país, no
existe información sobre sus daños, pero no constituye una
preocupación para los cañeros.
MARCHITEZ / Características
Organismo causal: Cephalosporium sacchari Butler.
•
Descrita por Butler y Khan en la India (1913), donde originaba
severas epidemias y se reporta su presencia en 29 países.
•
En México fue detectada por Chilton (1947) en La Joya, Camp.,
pero no existe información sobre sus daños y distribución.
•
Las plantas presentan marchitamiento gradual de las hojas, toman
color amarillo hasta secarse, aparentando afectación por sequía.
•
Los tallos se acorchan, ahuecan y disminuye significativamente su
peso, afectando el rendimiento agrícola y el contenido de azúcar.
Los tejidos internos son de color pardo.
•
Los micronidios del hongo que se desarrollan en el seno de
estructuras algodonosas, se propagan por el viento, lluvia, agua de
riego, aperos de labranza y propágulos de semilla.
•
El hongo ataca asociado con Colletotrichum falcatum y Fusarium
moniliforme, produciendo una acción sinérgica.
MARCHITEZ/Etiología y control
 Hongo imperfecto de micelio blanco grisáceo, micronidias
hialinas ovales cortas o elípticas largas.
 Se transmiten por estacas infectadas, suelo contaminado,
dispersión de las esporas por el viento, la lluvia y el agua de
riego.
 La selección de variedades resistentes es el método más
efectivo de combate.
 También se recomienda aplicar prácticas culturales
adecuadas a las plantaciones.
 Emplear material se plantación sano, procedente de un
sistema de semilla categorizada con termoterapia.
 Aplicar un fungicida apropiado a las estacas antes de la
plantación para protegerlas de la invasión por el organismo
causal y otros hongos del suelo.
POKKAH BOENHG / Síntomas
 Áreas blanquecinas en la base de las hojas y más tarde
clorosis generalizada en las hojas jóvenes.
 Arrugamiento y deformación de las hojas enfermas con
aparición de necrosis en el tejido foliar.
 Formación de bandas o rayas, así como manchas caférojizas que invaden el tejido verde y la parte superior
de la vaina.
 En presencia de lloviznas, nubosidad y alta humedad
relativa, la parte media basal del cogollo se pudre e
impide la elongación normal del tallo.
 En variedades susceptibles, además de las hojas
corrugadas, rajadas, se producen entrenudos cortos,
combados y se desarrolla el síntoma “corte de
machete”.
PUDRICIÓN DE LA BASE DEL
TALLO, RAÍZ Y VAINA
 Organismo causal: Marasmius sacchari Wakk.
 Descrita por Wakk en Java (1895). En 1925 destruyó la variedad
Otaheite en Hawaii.
 En 1948 Chilton la encontró en El Roble, Sin., Xicotencatl, Tamps., La
Concepción y Cuatotolapan, Ver., pero hasta la fecha sus daños son de
poca importancia.
 El hongo produce micelio blanco sobre las vainas inferiores y
gangrenas de color café en la porción subterránea del rizoma.
 Se pegan las vainas unas a otras y se adhieren al tallo, el crecimiento de
las raíces es obstruido; en tiempo húmedo las fructificaciones del hongo
crecen en la base de las plantas atacadas.
 Vive saprofíticamente en los restos de plantas y ataca por heridas a
plantas debilitadas por otras enfermedades o condiciones adversas.
 Se recomienda mejorar el drenaje interno, buena preparación de suelo y
nivelación del mismo.
PUDRICIÓN DE LA VAINA
Cytospora / Características
 Organismo causal: Cytospora sacchari
 Identificada por Butler (1906); India, es conocida actualmente en unos
30 países. En México se localiza en todas las regiones cañeras,
principalmente en la Cuenca del Papaloapan, Ver. y La Chontalpa, Tab.,
pero carece de importancia.
 Los síntomas consisten en manchas irregulares rojo-ladrillo a rojo-café
en las vainas, cerca del suelo.
 Las partes infectadas pueden permanecer aisladas o unirse hasta abarcar
toda la vaina.
 Las fructificaciones del hongo, en forma de picnidios, adoptan la
apariencia de protuberancias espinosas de color negro, pegadas a la
superficie de los órganos afectados, resultan ásperas al tacto.
 En alta humedad relativa el patógeno produce exudado ámbar que
contiene las esporas, que se propagan por viento y lluvia.
 Variedades resistentes en México: Mex68-P-23, Mex73-206, Co997 y
CP72-2086.
PUDRICIÓN ROJA (ROÑA) DE LA
VAINA/Descripción
 Organismo causal: Pellicularia rolfsii, Corticium rolfsii; descrito en
Java (1980) y actualmente distribuido por todos los países cañeros.
 Síntomas: Coloración roja-anaranjada en las vainas de la base del tallo,
más notoria en época de lluvias, sobre las vainas más viejas.
 Las zonas enrojecidas son de forma irregular con márgenes indefinidos.
 Pequeños esclerocios esféricos (masas compactas de micelio) con 0.50.8mm de diámetro, que se forman en la vaina y facilitan el diagnóstico.
 En los tallos se pueden producir úlceras superficiales, mientras que los
esclerocios se limitan a los bordes de las vainas.
 En México fue encontrada por Chilton (1948) en varios ingenios de
Sinaloa, Morelos, Oaxaca, Tabasco, Yucatán, Veracruz y Tamaulipas.
 Hasta la fecha no se han reportado afectaciones, por lo cual se considera
una enfermedad menor.
PUDRICIÓN DEL SISTEMA
RADICAL/Síntomas
 Se presentan a muchas confusiones porque carece de una
manifestación típica y puede enmascararse con otras causas.
 Se pudren las porciones terminales de las raíces primarias.
 Mueren las raicillas y como consecuencia, no hay
ramificaciones.
 Desaparecen los pelos radicales y las puntas de las raíces
atacadas toman color café y adquieren consistencia “bofa”.
 El perjuicio repercute en toda la planta, se retrasa el
crecimiento y a medida que avanza la enfermedad, las hojas
van tomando color amarillo.
 Se secan los ápices y bordes foliares y las hojas más viejas
caen prematuramente.
 Puede morir el cogollo y el ataque de microorganismos
secundarios produce fetidez.
PUDRICIÓN DEL SISTEMA
RADICAL/Medidas de control
 En el caso de la Región del Papaloapan, Ver. y La Chontalpa, Tab.,
donde se pierden las siembras por exceso de humedad en los
terrenos bajos, se deben aplicar las siguientes medidas:
 Mejoramiento del drenaje interno del suelo.
 Preparación profunda de los terrenos para las siembras de
fomento.
 Nivelación y emparejamiento de las partes bajas.
 Evitar encharcamientos del agua de lluvia. Mediante el
establecimiento de un sistema de zanjas y canales para el desagüe
superficial.
 Aplicar fertilización como método profiláctico, ya que las plantas
enfermas no pueden asimilarlo.
P. ROJA del tallo/Antecedentes
 Conocida también como “muermo rojo”, fue descrita por
Went en Java (1893) y ha causado la proscripción de
numerosas variedades en India y EUA.
 En la India es considerada la enfermedad más grave, donde
ha destruido variedades que se comportaban resistentes,
debido a la aparición de nuevas razas del hongo.
 En México fue reportada por Sánchez (1943) en El Mante,
Tamps., sobre Co281, 280 y POJ2878, asociada a los daños
del barrenador D. saccharalis.
 Chilton (1948) la encontró en todas las regiones cañeras de
México, pero sin afectaciones severas.
 Flores y Abarca (1961) la observaron en áreas cañeras de
Sinaloa y Tamaulipas con cierta intensidad, debido al ataque
de los barrenadores Diatraea y Eoreuma, con infestaciones
superiores al 20% de canutos barrenadores.
Pudrición roja/Síntomas
Pueden aparecer los síntomas en la nervadura central de las
hojas y en los tejidos internos del tallo.
Pequeños puntos rojos en el raquis que se extienden en ambas
direcciones y en algunas variedades se fusionan.
Posteriormente aparece coloración paja, sobre la que se destacan
las estructuras negras de la fructificación del hongo.
Pueden aparecer las lesiones descritas sobre las láminas foliares.
En el interior del tallo, coloración rojo púrpura que se oscurece al
envejecer y aparecen bandas blanquecinas transversales, que
constituyen la base para el diagnóstico visual.
La infección puede ocupar todo el entrenudo, pasar los nudos,
propagarse por varios canutos y llegar a ocupar todo el tallo.
P. ROJA DEL TALLO/Importancia
 Puede ocasionar fallas en la brotación. Cuando el hongo ataca las
yemas de los propágulos, origina resiembra costosa.
 Inversión de la sacarosa, disminución de la recuperación de azúcar
y problemas en el proceso de fabricación.
 Reduce la extracción de jugo, baja la pureza y produce otros
cambios químicos perjudiciales.
 Las condiciones ambientales tienen gran efecto sobre la infección
y las pérdidas; causando el deterioro de la semilla y las socas,
donde mueren tallos y cepas completas.
 En Sinaloa y Tamaulipas, donde predomina un clima
semidesértico, su propagación es alta debido al daño de los
barrenadores.
 En los ingenios de Sinaloa, con infestaciones de barrenadores de
18-20%, las pérdidas han llegado hasta 6 000 ton de azúcar/año,
en una molienda de 500 000 ton de caña (Flores, 1997).
P. ROJA DEL TALLO/ Medidas de combate
 Preparación adecuada del suelo para las siembras de
reposición; quema y destrucción de la cosecha anterior.
 Selección de la semilla, evitar empleo de cañas atacadas
por barrenadores y el hongo.
 Aplicar a la plantación atenciones culturales adecuadas.
 Garantizar medidas de combate contra barrenadores y
otras plagas que facilitan la penetración del hongo.
 Plantar variedades resistentes a los barrenadores y al
hongo; en México, Co421, NCo310, CP44-101 y CP722086. Entre las susceptibles, Co213, 290 y POJ2878.
ROYA COMÚN/ Síntomas y signos
Manchas pequeñas de color amarillo, visibles en
ambas caras de la hoja, que aumentan de tamaño,
toman coloración púrpura y halo clorótico.
Formación de pústulas por el envés, las uredosporas
rompen el tejido epidérmico y se liberan en grandes
cantidades.
En ataques severos, “coalescen” varias lesiones para
necrosar gran parte del tejido foliar.
Se presenta coloración herrumbrosa en las hojas
debido a la presencia de las pústulas y la plantación
adopta la apariencia de un campo quemado.
Uredosporas
Teliosporas
ROYA COMÚN/ propagación/México
 Detectada por Huerta y col. (1979) en Cárdenas, Tab. Sobre
B4362; se supone que el inóculo fue acarreado por los vientos.
 Poco después apareció en todos los ingenios de la cuenca del
Papaloapan, hasta los de Tabasco y Quintana Roo.
 Se propagó rápidamente en los cañaverales a lo largo de la
vertiente del Golfo de México, donde encontró condiciones
favorables.
 La B4362 estaba enferma en todas las zonas cañeras del país;
daños más graves en terrenos de mal drenaje interno, faldas de
la serranía (500 y 1000msnm), poca luminosidad, muchos días
nublados, lloviznas: Jalapa, Huatusco, Córdoba, Orizaba.
ROYA COMÚN/ Propagación
 Uredosporas transportadas a grandes distancias por el viento,
agua de lluvia y riego.
 Plantas jóvenes más afectadas, principalmente en terrenos mal
drenados, cerca de las estribaciones de la sierra, de 500 a
1000 msnm.
 Días nublados, poca luminosidad en las tardes, lloviznas que
producen alta humedad relativa, por encima de 80%.
 Temperaturas diurnas de 18 a 25ºC, fovorecen la propagación
de los días que prevalecen los “nortes”, durante diciembre a
marzo.
 Las esporas se mantienen viables por 5 semanas a 18-28ºC,
las pústulas aparecen después de 10 a 14 días de la
inoculación
ROYA COMÚN/Escala de incidencia
1. No se observan síntomas.
2. Manchas cloróticas y necróticas en el follaje.
3. Pústulas dispersas en las láminas foliares de
las hojas inferiores y centrales de la planta.
4. Abundantes pústulas voluminosas en todas
las hojas de la planta; se forman extensas
áreas de tejido muerto; adelgazamiento de
los tallos, acortamiento de los entrenudos y
cepas achaparradas.
ROYA COMÚN/Variedades/México
 Susceptibles: B4362, B51415,CL41-223, CL54-378, F134,
H49-5, Q80, Mex60-445, Mex60-1474, Mex66-1428, Mex691456 y Mex70-421.
 Tolerantes: B3439, Co421, Mex58-1230, Mex64-1214,
Mex69-1460, My5514 y PR1048.
 Resistentes:Co213, Co331, Co997, CP44-101, CP29-203,
CP72-1210, CP72-2086, CP74-2005, H37-1933, L60-14,
Mex54-81, Mex56-18, Mex57-473, Mex59-32, Mex64-1487,
Mex68-200, Mex68-P-23, Mex69-290, Q68, NCo310.
ROYA / Medidas de combate
Plantar variedades resistentes.
Mantener composición varietal
adecuada.
Aplicar mecanismos de escape en el
tiempo.
Aplicar mecanismos de escape en el
espacio.
Demoler plantaciones infectadas
intensamente.
Carbón/ Continente Americano
1877. Reportado en Sudáfrica
(63) 1940. Aparece en Argentina
(4) 1944. Paraguay
(2) 1946. Brasil
(2) 1948. Bolivia
(26) 1974. Guyana
(2) 1976. Martinica, Trinidad, Jamaica
(2) 1978. EUA, Belice, San Cristóbal, Guadalupe,Cuba,
Venezuela, Honduras
(1) 1979. Nicaragua, Colombia, Barbados
(1) 1980. Haití, México, Panamá
(1) 1981. Guatemala, Costa Rica, Puerto Rico
CARBÓN/ Síntomas y signos
 Formación de una estructura en forma de látigo con
grosor aproximado de un lapiz y longitud desde
varios centímetros hasta más de un metro.
 En el interior del látigo se forma una masa de esporas
negras enceradas en un membrana plateada, que al
romperse las libera.
 Aparición de la “cepa herbácea”, formada por
numerosos brotes delgados con entrenudos alargados,
hojas rígidas y estrechas en ángulo agudo con el tallo,
como en una cepa de zacate.
 Formación de látigos a partir de las yemas laterales
del tallo, que en ocasiones sufren estimulación,
originando un manojo de látigos.
CARBÓN/LLEGADA Y
PROPAGACIÓN/MÉXICO
 Aparece en Álvaro Obregón, Q.Roo, procedente de Belice
(1980) sobre Mex56-18; poco después en la Joya, Camp. Sobre
NCo310 y en la región del Papaloapan, ver en Co213, L60-14,
Mex55-261.
 En 1981 se localizó en la Región de las Huastecas en Co290,
Mex55-32 y B49119.
 En 1985 se encontraba en todas las regiones cañeras del país,
excepto Sinaloa; las var. Más susceptibles Co213 y NCo310 en
San Cristóbal, L60-14 en El Portero y Mex55-32 en Ponciano
Arriaga.
 Durante1981 a 1988 se realizó entresaca y quema en 4 500ha.
Hasta 1984 la infección llegó hasta 5 000 plantas/ha; a partir de
1985 fueron aumentando en progresión geométrica, llegando a
100 000 plantas enfermas/ha en 1988.
CARBÓN/SEVERIDAD/DEPENDE DE:
Tipo de infección (primaria o
secundaria).
Tipo de cepa (caña planta o retoño).
Tiempo de la infección (temprana o
tardía).
Variedad infectada (susceptible o
resistente).
CARBÓN/ PÉRDIDAS
• Cuando se plantan variedades susceptibles y
prevalecen condiciones ambientales favorables,
las pérdidas pueden ser elevadas.
• Se han estimado hasta el 73% de la cosecha
potencial.
• En condiciones experimentales se han
determinado disminuciones del 45% en peso,
11.4% en brix y 16.9% de la pol en caña, para una
pérdida real entre 23 y 37%.
CARBÓN/Escala de incidencia
1. No se observan síntomas.
2. Escasos látigos carbonosos (menos del 5%).
3. Abundantes látigos apicales (menos del 15%),
algunos látigos laterales.
4. Abundantes látigos apicales y laterales (más del
15%), proliferación de yemas y aspecto
herbaceo; puede presentarse la muerte de
plantones completos.
CARBÓN/VARIEDADES/MÉXICO
 SUSCEPTIBLES: Co453, CP44-101, Mex54-81,Mex55250, Mex57-29, Mex57-1285, Mex60-207, Mex60-1474,
Mex69-436, Mex69-479, Mex69-1511, Pindar y Pepe Cuca.
 MODERAD. RESISTENTES: Co281, Co419,Mex52-17,
Mex56-18, Mex56-476, Mex56-541, Mex57-354, Mex58326, Mex58-1230, Mex58-1485, Mex66-454, Mex66-1235,
Mex66-1428, Mex68-1347, Mex70-1484, PR1048, Q68, Q77
y SP70-1284.
 RESISTENTES: Co997, CP72-2086, CP74-2005, Mex57473, Mex58-418, Mex59-32, Mex60-1403, Mex60-1459,
Mex64-1214, Mex67-351, Mex68-200, Mex69-290, Mex691460, Mex70-421, My5514, PR980 y Q96.
CARBÓN / Medidas de combate
Empleo de variedades resistentes.
Mantener una composición varietal adecuada.
Emplear material de plantación libre de la enfermedad.
Rastreo sistemático de las plantaciones nuevas.
Arrancar de raíz los vástagos y cepas enfermas y
destruirlas por incineración.
Establecer una adecuada rotación de cultivos.
Garantizar buena preparación del suelo cuando se planta
caña sobre caña.
Voltear las plantaciones infectadas intensamente.
ENFERMEDADES EXÓTICAS/
Añublo lanoso
Organismo causal: Peronosclerospora sacchari, P.philippinensis,
P.miscanthi, P.spontanea.
Antecedentes: Reportada en 1909 en Nueva Guinea, está confirmada en 9
países del Pacífico Occidental, del Este y Sudeste de Asia. Mayores brotes
Australia, Fiji, Filipinas y Taiwán. También presente en India, Indonesia y
Tailandia, así como en cañas silvestres de Papua, NG.
Síntomas: Moteado y rayas amarillentas, separadas por áreas de color
normal, que comienzan en las hojas jóvenes del huso y se extienden a todo el
follaje. Vellosidades del hongo salen por los estomas del envés de las hojas.
En brotes jóvenes aparecen rayas poco definidas, de color amarillento,
paralelas al raquis. Algunas plantas pueden morir y las que sobreviven,
presentan hojas estrechas, descoloridas y más erectas. Tallos delgados y
retoñamiento pobre.
Hospedantes: Saccharum, Zea mays y Euclaena mexicana.
Importancia: Posee un gran potencial destructivo.
Control: Semilla sana, variedades resistentes y HTT.
EXÓTICAS/Enanismo
 Antecedentes: Observada en Australia sobre POJ2878 y POJ2714 en
1930 y no se ha detectado en ningún otro país.
 Organismo causal: Pudiera ser un virus.
 Síntomas: Rayas estrechas de color blanco en las hojas; cogollo
pequeño, erecto, en forma de abanico y deformado. Los bordes de las
hojas y ápices son necróticos y secos. Pueden presentarse cortes
transversales en los limbos. En variedades susceptibles se presentan
diferentes grados de enanismo, aspecto herbáceo y no se desarrollan
tallos molibles.
 Afectaciones histológicas: Dentro de las áreas de las rayas blancas se
agrandan los haces vasculares, adquieren formas irregulares y se
fusionan con los adyacentes.
 Transmisión: No se ha producido transmisión por inoculación
artificial. El saneamiento baja la propagación pero no erradica la
enfermedad, lo que sugiere algún hospedante además de la caña.
 Control: Variedades resistentes y saneamiento. La HTT no es efectiva.
EXÓTICAS/Enanismo de Ramu
 Organismo causal: Virus
 Antecedentes: Detectado en el Valle de Ramu, Papua, NG en
1986. No existen referencias de su presencia en otro lugar.
 Síntomas: Coloración roja del follaje, secándose los ápices
de las hojas más jóvenes. Marcada reducción de la velocidad
de crecimiento, entrenudos cortos y tallos delgados.
 Reducción del sistema radical, las raíces más viejas
necróticas y atrofiadas. Los retoños muestran rayado
amarillento y se afecta la capacidad de retoñamiento. Pueden
observarse semejanzas sintomatológicas con mosaico, hoja
blanca y mosaico estriado.
 Transmisión: Propàgulos y el insecto Eumetopina flavipes.
 Hospedantes: No se han detectado.
EXÓTICAS/E. de Fiji
 Organismo causal: Virus.
 Antecedentes: Detectada en 1894, presente en Australia, Fiji, Filipinas,
Indonesia, Islas Salomon, Madagascar, Malasia, N. Caledonia, Papua NG
y Samoa,
 Síntomas: Enanismo pronunciado, alteraciones de color y textura de las
hojas, así como su hábito de erección.
 Formación de agallas en el envés, sobre los limbos o el raquis; son
proliferaciones del floema, por lo que se presentan paralelas al raquis.
Pueden alcanzar 50mm de longitud, 2-3 de ancho y 1-2 de alto; son de
color verde más claro que la superficie foliar.
 Transmisión: Se trasmite por propágulos infectados y vectores como
Perkinsiella saccharicida, P. vastatrix y P. vitiensis.
 Hospedantes: Complejo, Saccharum, Erianthus maximum y algunas
variedades de maíz y sorgo, infectadas artificialmente.
 Importancia: Puede destruir las plantaciones si no se aplican medidas.
EXÓTICAS / Enfermedades por
Sclerophthora
 Organismo causal: Sclerophthora macrospora.
 Antecedentes: Ha sido detectada en Australia, Mauricio,
EUA, México y Péru.
 Síntomas: Hojas pequeñas, gruesas, con textura frágil.
Toman coloración amarillenta, con bandas irregulares
blanquecinas entre las nerviaciones. Los ápices y bordes
se secan y mueren prematuramente. Las esporas del
hongo aparecen sobre las hojas como diminutos cuerpos
blancos y los conidios por el envés. Cepas con enanismo
severo, desarrollo excesivo de brotes y en ocasiones,
agallas en el tallo.
 Transmisión: Por semilla agámica y el arrastre de las
esporas, durante la escorrentía de las aguas.
EXÓTICAS / Estría roja
Organismo causal: Pseudomonas syringae pv.
Syringae.
Antecedentes: Detectada en plantaciones
cañeras de la República de Irán.
Características de la enfermedad: Se
presentan rayas largas y estrechas en las hojas,
pero no se han descrito los detalles de la
sintomatología.
Se impone la necesidad de realizar
investigaciones para determinar su importancia.
EXÓTICAS / Falsa raya roja
 Organismo causal: Xanthomonas sp.
 Antecedentes: Observada en Brasil en 1997 y está
distribuida en las principales áreas cañeras de la región
Centro-Sur de dicho país.
 Inicialmente fue confundida con la raya roja bacteriana.
 Síntomas: Rayas de color rojo oscuro, que se desarrollan del
centro de la hoja hacia el ápice. No se presenta exudado
bacteriano ni pudrición del cogollo, como sucede en la raya
roja.
 Características de la bacteria: Coinciden con las descritas
para Xanthomonas axonopodis pv. vasculorum.
 Importancia: Hasta la fecha no se han reportado
afectaciones del rendimiento.
MANCHA NEGRA DE LA HOJA
Características
 Organismo causal: Phyllachora sacchari
 Ha sido observada en áreas tropicales húmedas del
Archipiélago Indonesio y Papua, Nueva Guinea.
 Los primeros síntomas consisten en pequeñas manchas
negras que aparecen en las láminas foliares.
 Posteriormente, las áreas necróticas se rodean de un halo
clorótico.
 Las lesiones pueden unirse y originar grandes áreas
necróticas y de color paja.
 Los síntomas aparecen primeramente en las hojas más viejas
y si las condiciones ambientales son favorables, la infección
puede avanzar hacia las más jóvenes.
EXÓTICAS / Mancha roja de la hoja
 Organismo causal: Dimeriella sacchari.
 Antecedentes: Se ha detectado en Australia, Indonesia, Nueva
Guinea, Cuba, Panamá, Trinidad y otros países.
 Síntomas: Manchas irregulares en los limbos foliares, de color
rojo claro al principio y después cambian al rojo oscuro. Aparecen
primero en las hojas jóvenes. Sus dimensiones varían desde 2
hasta 10mm, o pueden ser mayores y dan la impresión de gotas de
sangre sobre la superficie de las hojas. Se producen peritecios
sobre las manchas, que al mirarlos con una lupa, asemejan
pequeñas pelotas negras, que permiten el diagnóstico.
 Propagación: Es favorecida por períodos de alta humedad relativa
y altas temperaturas.
 Importancia: No se han observado afectaciones.
 Control: No es necesario aplicar medidas de combate.
EXÓTICAS / Matazacatosa-hoja blanca
 Organismo causal: MLO (fitoplasma)
 Antecedentes: Observada en la India en 1949 y se encuentra en 7 países:
Bangladesh, Birmania?, India, Malasia, Nepal, Srilanka y Sudán.
 Síntomas: Clorosis generalizada en el follaje, que en ocasiones se
confunde con albinismo. Masas de pequeños brotes raquíticos en forma
de manojos, que dan la apariencia de una cepa de zacate. Hojas cortas y
estrechas con una clorosis tan pronunciada que quedan completamente
desprovistas de clorofila y finalmente mueren. Tallos delgados,
entrenudo cortos, yemas escamosas que adoptan forma alargada; al brotar
originan vástagos laterales cloróticos.
 Transmisión: Propágulos infectados, Rhopalosiphum maidis,
Melanaphis sacchari y M. sacchari f. indosacchari.
 Hospedantes: Sorghum vulgare, Cynodon dactylon y Saccharum spp.
 Importancia: Daños irreversibles, aumentan al envejecer la cepa.
EXÓTICAS / Mosaico estriado
Organismo causal:Virus?
Antecedentes: Detectada en Australia en 1968 y
posteriormente se informó su presencia en la India.
 Síntomas:
•Estrias cortas y finas de color verde claro en las hojas más
jóvenes del cogollo, con 0.2-0.5mm de ancho. La cantidad de
rayas es variable, llegando a cubrir totalmente la hoja.
•Las cepas muestran enanismo severo y retoñamiento pobre; en
algunas variedades se desarrolla el síntoma foliar sin llegar al
enanismo.
Transmisión: Propágulos enfermos y por inoculación.
mecánica.
Control: Semilla sana y no se conoce el efecto de la HTT.
EXÓTICAS / Moteado bacteriano
 Organismo causal: Erwinia chrysanthemi
 Antecedentes:Reportada en Australia en 1957 y no se ha
observado su presencia en otro país.
 Síntomas: Bandas de color blanco-cremoso con 1-2mm de
ancho, que se extienden de la base hacia arriba, paralelos a
los haces vasculares. En cada hoja se presentan una o más
bandas que se ensanchan y forman manchas de color
anaranjado a rojo mohoso. Moteado clorótico sin bandas
definidas indica la presencia de infección sistémica. Escoba
de bruja y los brotes laterales presentan los síntomas. Con
alta temperatura y H.R. Se forman glóbulos de exudado
bacteriano por el envés, agallas y yemas múltiples.
 Control:Variedades resistentes, semilla sana, destrucción de
plantones enfermos y malezas infectadas.
EXÓTICAS / Moteado rojo de la hoja
 Organismo causal:Virus del tipo Furovirus
 Antecedentes: Se ha detectado en el norte de Senegal y en el sur
de Burkina Faso.
 Síntomas: Pequeñas manchas cloróticas dentro de bandas
estrechas o anchas, a lo largo de las láminas foliares. Más tarde las
manchas toman color rojo y las exhiben un moteado rojo sobre
amplias áreas de los limbos. En algunas variedades variedades
aparecen rayas largas sobre sobre las hojas más jóvenes, que
originan bandas de forma elíptica.
 Transmisión: Por propágulos, por el suelo donde existió caña
enferma.
 Hospedantes:Saccharum spp., Arachis hypogaeae y Sorghum
spp.
 Partícula viral:Varilla con 250-300 x 20nm.
 Control: HTT no efectiva.
EXÓTICAS/Pudrición del verticilo
• O. causal: Pseudomonas rubrilineans pv. spindulifoliens.
• Antecedentes: Observada recientemente en La India.
• Síntomas:Pudrición del “spindle”, sin destrucción del punto de
crecimiento ni brotación de yemas laterales.
• Transmisión: El organismo causal se transmite por corrientes
de aire y la infección de las plantas se produce a través de los
estomas. Afecta tanto a la caña planta como a las socas.
• Hospedantes: No se ha observado en otras plantas además de
caña de azúcar.
• Aislamiento: El organismo causal ha sido aislado sobre agar
de King B y su patogenicidad se ha comprobado mediante
inyección a las plantas y por el método cubierta de aluminio.
• Sinergismo: Se ha observado asociación sinérgica del
organismo causal con el hongo que produce el pokkah boeng.
EXÓTICAS/Rayado
 Organismo causal: Virus
 Antecedentes: En 1914 fue observada en Natal, Sudáfrica y se ha
detectado en 16 países - Benin, Cabo verde, Costa de Marfil, Egipto,
India, Kenya, Madera, Malawi, Mauricio, Mozambique, Pakistan,
Reunión, Sudáfrica, Uganda, Zimbabwe Síntomas: Rayas cloróticas estrechas, translúcidas y paralelas al raquis.
Uniformes en cuanto al ancho; miden 0.25-0.50mm, pero varían por la
longitud entre 0.5 y 10mm o más. La frecuencia de las rayas puede
variar de una planta a otra, pero es uniforme sobre cada hoja de una
misma planta, una vez que el virus está establecido.
 Transmisión: Propágulos de semilla y por el vector Cicadulina mbila,
que vive sobre maíz, caña y otras hierbas. No se conoce transmisión
mecánica.
 Diagnóstico: Visual, observando hojas jóvenes del huso, IME y ELISA.
 Importancia: Puede producir disminuciones hasta 11% de la cosecha.
 Control: Variedades resistentes, eliminación del vector. HTT no
efectiva.
Roya anaranjada/Brote Australia, 2001

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Sequía intensa de junio a octubre/2000.
Altas precipitaciones de octubre a diciembre.
Problemas de enyerbamiento y sobrehumedecimiento.
Entre Navidades y Año Nuevo, condiciones de alta humedad.
De forma explosiva, surgió un brote de roya anaranjada en algunos
bloques de Q124 en enero/2001.
Esta variedad de alto rendimiento ocupaba el 85% del área cañera
local.
Para disminuir los daños se aplicaron fungicidas a 71 000ha.
También fueron afectadas Q136, Q173 y Q182.
El rendimiento de Q124 es de 100 ton caña/ha y bajó a 65, lo que
representa 35% de pérdidas.
Se recomiendan las variedades resistentes Q157, Q170 y Q190.
EXÓTICAS/ROYA
ANARANJADA/Distribución/19 Países
Australia
Indochina
Pakistán
Birmania
Indonesia
Papua NG
China
Isla Salomon
Samoa
Filipinas
Japón
Sri Lanka
Fiji
Malasia
Taiwán
Guam
N. Caledonia
Tailandia
India
EXÓTICAS / Tizón de la hoja
 Organismo causal: Leptosphaeria taiwanensis.
 Antecedentes: Solamente se ha detectado en Filipinas, Japón y
Taiwán.
 Síntomas: Pequeñas manchas de color amarillento, punteadas de
rojo, en forma de huso, estrechas y elípticas o alargadas. Son
visibles por ambas caras de la hoja. Posteriormente se forman
rayas alargadas café rojizo, que se unen en bandas separadas por
porciones verdes.
 Las plantas enfermas vistas desde lejos tienen apariencia caférojiza.
 Aparecen fructificaciones negras del hongo en los márgenes de las
hojas viejas.
 Hospedantes:Solamente caña de azúcar.
 Control:Variedades resistentes, destrucción de plantas enfermas.
EXÓTICAS / Virus baciliforme
 Organismo causal:Virus del tipo badnavirus.
 Antecedentes: Probablemente distribuida por todo el mundo
cañero. Partícula viral con 120-150 x 30mm.
 Síntomas: Generalmente no se presentan síntomas foliares, pero
la infección ha sido asociada con moteado clorótico predominante
en algunos clones nobles. En infecciones mezcladas con el VMCA
los síntomas de está última se acentúan considerablemente.
 Transmisión:Propágulos infectados, chinche harinosa rosada
Saccharicoccus sacchari y harinosa gris Dysmicoccus boninsis.
 Hospedantes: Saccharum officinarum, híbridos comerciales, así
como en Musa spp., Sorgum halepense, Rottboellia
cochinchinense y Brachiaria extensa.
 Importancia: Se desconoce.
 Control: HTT.
EXÓTICAS/Virus semejante a
closterovirus
 Organismo causal: En estudio. Partícula viral: 400-1600
x12nm.
 Antecedentes: Detectado en EUA, Malawi y Mauricio.
 Síntomas: No se han observado.
 Transmisión: Propágulos infectados y chinche harinosa
rosada Saccharicoccus sacchari.
 Hospedantes: Cañas nobles e híbridos.
 Diagnóstico: IME, ELISA.
 Hospedantes: Pennisetum, Sorghum, Panicum, Brachiaria
y Setaria.
 Control: Semilla sana, drenaje de las áreas, destrucción de
los hospedantes enfermos.
ENFERMEDADES/
Combate/
Diseminación
Los agentes que más contribuyen para la diseminación de los
organismos patógenos, son:
 Corrientes de aire, diseminan esporas y bacterias.
 La lluvia a través del golpe de las gotas sobre las
hojas.
 Transporte del suelo en seco por el viento, los
animales y el hombre.
 Por los insectos vectores: pulgones, saltahojas.
 Manipulación de plantas enfermas durante la
cosecha, atenciones culturales y picado de la semilla
agámica de la caña de azúcar.
ENFERMEDADES/ Influencia del
Ambiente
Temperatura del aire y su porcentaje de
humedad.
Frecuencia y cantidad de las precipitaciones.
Temperatura, humedad, fertilidad y reacción
(PH) del suelo.
Contaminaciones del ambiente: gases dañinos.
ENFERMEDADES/Medidas preventivas
Comprenden las alternativas para evitar la propagación
de los organismos patógenos y el desarrollo de
enfermedades.
 Erradicación: eliminación del agente patógeno, una vez
que ha logrado establecerse en el área y sobre sus
hospedantes alternativos.
 Exclusión: para evitar la entrada del patógeno al área de
cultivo.
 Protección: proteger las plantaciones con productos
químicos o medios biológicos, donde la enfermedad está
generalizada.
 Inmunización: Aplicar métodos para incorporar a las
variedades resistentes a las enfermedades.
TERMOTERAPIA/Sistemas más
usados
Agua caliente: Efectivo para controlar numerosas
enfermedades. Se manejan diferentes
temperaturas y tiempos de exposición.
Aire caliente: Permite tratar tallos jóvenes sin
afectar la brotación, pero el color no se distribuye
uniformemente, lo cual puede originar escapes.
54ºC/8h.
Vapor aireado: Una cantidad constante de aire se
mantiene a una temperatura determinada mediante
inyección permanente de vapor. 54ºC/4h.
AGUA CALIENTE/Hidrotermoterapia
TIPOS DE TRATAMIENTOS
Cortos: 53ºC/20min; 52ºC/30min; 51ºC/1h.
Largos: 50.5ºC/2h; remojado a t ambiente 2448h+50ºC/2½-3h.
Seriados: 54.8ºC/7min+7min de receso
+57.3ºC/7min+7min de receso+57.3ºC/7min y
repetir esta secuencia a las 24h.
ENFERMEDADES/Lucha integrada
 Mejora genética para obtener variedades resistentes.
 Composición varietal balanceada, acorde con los principios
fitopatológicos.
 Empleo de semilla categorizada con alto grado de pureza y
sanidad, para fomentar nuevas plantaciones.
 Manejo agrotécnico sostenible y atenciones culturales
adecuadas.
 Obtención de somaclones resistentes por Biotecnología.
 Obtención de plantas transgénicas por Ingeniería Genética.
 Utilización de microorganismos antagonistas de agentes
patógenos.
 Empleo de sustancias naturales con actividad antimicrobial.
 Aplicación de mecanismos de escape en el espacio y en el
tiempo.
HIDROTERMOTERAPIA/Requisitos
 Edad de la semilla, 9-10 meses.
 Yemas bien formadas. No muy jóvenes ni viejas.
 Corte de los propágulos. Recto, al centro del entrenudo.
 Temperatura de tratamiento. Estable.
 Tiempo de tratamiento (duración). Exacto.
 Al terminar el tratamiento. Enfriamiento inmediato.
 Enfriamiento y tratamiento químico. En una operación.
 Manipulación pre y postratamiento. Cuidadosa.
 Reposo postratamiento (36-48h). Lugar fresco.
 Protección de las hormigas. Insecticida apropiado.
 Plantación en suelo mullido y tape con 5cm d tierra.
 Humedad de 80-90CC hasta 45-60 días.
MÉTODOS Y TÉCNICAS de diagnóstico
 Observaciones macroscópicas
- De muestras
- De campo
 Observaciones microscópicas
- De hongos
- De bacterias, fitoplasmas
- De nemátodos
- De partículas virales
 Métodos de aislamiento
- De hongos
- De bacterias, fitoplasmas
- De nemátodos
- Investigaciones virológicas
 Investigaciones y comprobaciones de laboratorio
- Métodos y técnicas para diagnosticar una enfermedad fungosa
- Para diagnosticar enfermedades bacterianas
- Causadas por virus, fitoplasmas
- Producidas por nemátodos
- Producidas por otras causas
Toma de la muestra
Aspecto principal en la emisión de un diagnóstico
certero, después de realizar el análisis
fitopatológico.
Deben garantizarse 3 aspectos fundamentales:
Representatividad de la muestra
Calidad de la muestra
Toma de datos
DIAGNÓSTICO/ DATOS DE LA
MUESTRA
Deben acompañar la muestra porque aportan
cuestiones que ayudan a esclarecer el diagnóstico:
Especie y variedad de la planta atacada.
Localización geográfica.
Tipo de suelo.
Régimen agrotécnico a que ha estado sometida
la plantación (fertilización, riego, cultivos,
herbicidas, otros pesticidas, etc.)
DIAGNÓSTICO/Virus,
Fitoplasmas/Vectorología
 Empleo de un vector (insecto, fanerógama) para diagnosticar una
enfermedad. Gran utilidad y precisión.
 Se colocan insectos obtenidos en laboratorio, con ausencia de
partículas virales en sus cuerpos, sobre plantas sospechosas.
 Es necesario conocer: tiempo de adquisición, período de latencia
en el vector, retención de la infectividad, transmisión de la
infectividad por los estadíos del vector y transmisión transovárica.
 La inoculación de partículas virales puede ocurrir rápidamente y
producir la aparición de síntomas.
 Se requiere disponer de jaulas entomológicas con malla antiáfidos,
tubos de ensayo, macetas, frascos.
 Insectos del orden Homóptera: áfidos y cicadélidos, así como
plantas vectoras del género Cuscuta.
DIAGNÓSICO/Virus,
Fitoplasmas/Transmisión mecánica
 Numerosos virus se trasmiten de forma mecánica, mediante la
frotación o roce de savia de una planta enferma con otra sana.
 Se requiere pequeñas heridas o daños mecánicos en la
superficie de la planta indicadora.
 Abrasivos como carborundum, arena de sílice, usados antes
de la aplicación de los extractos de plantas enfermas,
garantiza el proceso de penetración.
 Los extractos de plantas enfermas obtenidas por maceración
se aplican mediante frotación, aspersión, unción.
 Como otra alternativa se puede emplear agujas hipodérmicas.
DIAGNÓSTICO/Métodos de inoculación
para enfermedades bacterianas
•
•
•
•
Por filtración mediante aguja hipodérmica.
Infiltrando con el uso de aspersores a presión.
Punción bajo gotas de suspensión bacteriana.
Pulverización del inóculo con un abrasivo
inerte.
• Adición al suelo de una suspensión bacteriana.
DIAGNÓSTICO/Métodos de inoculación
para enfermedades fungosas






Aspersión de una suspensión conidial.
Espolvoreo de esporas secas.
Inoculación a través del suelo infectado.
Inoculación en tejidos internos de la planta.
Inoculación a través de heridas.
Inoculación de órganos vegetales cortados.
AISLAMIENTOS DE
HONGOS/MODALIDADES (I)
 Es fácil cuando sobre el tejido enfermo se encuentran solamente
las estructuras del organismo causante, sin contaminantes.
 Como ejemplo puede citarse los mildios y carbones que fructifican
profusamente.
 Numerosos hongos que producen estructuras reproductoras sobre
el sustrato natural que parasitan, no lo hacen en medios
artificiales.
 Para su identificación hay que prescindir de métodos de
aislamiento.
 Un caso de esta naturaleza son los Ascomycetes, que rararemente
producen sus cuerpos fructíferos sobre medios artificiales.
 El aislamiento de hongos productores de micelio aéreo esporógeno
resulta exitoso transfiriendo porciones del micelio o masas de
esporas, sobre un medio apropiado.
AISLAMIENTO DE HONGOS/
Cámara húmeda
 Cuando el crecimiento del micelio o la formación de esporas
no es apreciable sobre el tejido del hospedante, se emplea la
técnica “Cámara húmeda”.
 Se toman porciones de dicho tejido, se lava débilmente bajo
un chorro de agua corriente por 10-15min. para remover
esporas de saprófitos.
 Luego son colocados sobre papel de filtro humedecido dentro
de placas Petri.
 Incubar durante varias horas a 26-30ºC.
 Si los saprófitos crecen a mayor velocidad y cubren la
superficie del tejido, enmascaran el verdadero agente causal.
 Entonces debe procederse a la desinfestación superficial.
 Puede emplearse hipoclorito de sodio 1% o Cl2Hg 5% antes
de colocar los pedazos de tejido en la cámara húmeda.
BACTERIAS/Aislamiento
Lavar los tejidos en agua corriente.
Extraer el jugo en un motero con H2O estéril.
Disolver 1ml de jugo en 9ml de H2O estéril.
Echar una gota de dilución en la primera placa Petry
con medio de cultivo.
Con una espátula, sembrar en la primera, segunda y
tercera placa.
Sobre las placas, escribir el número de la muestra y
el de la placa.
Colocar las placas en incubación.
CUARENTENA/Caña de azúcar
 Definición: Conjunto de regulaciones,
restricciones y prohibiciones que se imponen
al trasiego internacional y nacional de plantas,
animales y otros productos que puedan ser
portadores de plagas y enfermedades.
 El movimiento internacional de variedades de
caña de azúcar es un importante factor para el
incremento de los rendimientos, pero lleva
implícito el riesgo de introducir enfermedades
y plagas exóticas.
CUARENTENA/Regulaciones
 Son importantes para el movimiento internacional y
de una región a otra, dentro del mismo país.
 Deben especificar el tipo de material que puede ser
recibido: porciones de tallo, rizomas, semilla botánica,
cultivo de meristemos.
 Las restricciones sobre la importancia de especies
emparentadas con la caña de azúcar.
 Los tipos de materiales que no se aceptan para el
relleno y empacado del objeto que se va a introducir.
 Precauciones especiales que es necesario tomar para
realizar importaciones de áreas con antecedentes de
enfermedades exóticas.
 Son de obligatorio cumplimiento para evitar la
introducción accidental de organismos cuarentenados.
CUARENTENA/Inspección y
detección
 Para minimizar los riesgos de introducir agentes
patógenos y plagas en los embarques de variedades.
 El país exportador debe enviar material inspeccionado
periódicamente, durante un ciclo completo de
desarrollo.
 Al recibirse el embarque, debe ser inspeccionado
minuciosamente todo el material.
 Se emplearán los instrumentos necesarios para detectar
cuerpos fructíferos y esporas de hongos, exudado
bacteriano o insectos.
 Cuando las plantas hayan crecido, se realizan los
exámenes mediante técnicas de ME, serología y
moleculares.
CUARENTENA/Instalaciones y
aislamiento
 El proceso cuarentenario se debe realizar con
suficiente aislamiento de las plantaciones cañeras.
 De esta forma se evita que un agente patógeno exótico
pueda ser introducido por las corrientes de aire,
insectos o cualquier otro vehículo de propagación.
 Cuando el material procede de un país con
instalaciones cuarentenarias adecuadas, personal
capacitado y antes del embarque se realizaron
inspecciones y diagnóstico, los riesgos son menores.
 Se puede plantar 50-100km de las plantaciones
comerciales, sin necesidad de invernadero.
 Las importaciones de propágulos tomados de áreas
comerciales requieren de un proceso cuarentenario
riguroso.
CUARENTENA/Tratamientos
 Durante el proceso cuarentenario se aplican a las variedades
tratamientos químicos, térmicos y la combinación de ambos.
 Diferentes sustancias químicas se emplean para tratar los
propágulos o son aplicados en las instalaciones
cuarentenarias.
 Complementariamente a la acción de la termoterapia, evitan
que los insectos, ácaros u otras especies de animales hagan
contacto con los propágulos o plantas en cuarentena.
 Los tratamientos con agua caliente, aire caliente o vapor
aiereado reducen o eliminan el riesgo de desarrollo de
enfermedades y plagas.
 El tratamiento más utilizado es la hidrotermorapia,
empleando diferentes combinaciones temperatura-tiempo.
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TODA BUENA VARIEDAD TERMINA CON UNA MALA