ALUMNA: ROBALINO GABRIELA
SEMESTRE: CUARTO «B»
DOCENTE: GEOVANNY BONIFAZ
CÁTEDRA
HEMATOLOGÍA II
 FUNDAMENTO: Colorante de Romanowsky,
con componentes básicos que tiñen las
estructuras ácidas y componentes ácidos
que tiñen las estructuras básicas.
 TINCIÓN: giemsa diluida 1/10 agua destilada.
 MUESTRA: sangre capilar fresca o venosa anticoagulada.
El coagulante de elección es la heparina o el EDTA.
 USO: Colorante utilizado en la búsqueda diagnóstica de
parásitos intestinales como Giardia y de hemoparásitos
como Leishmania y Plasmodium.
 Extender la muestra en un porta
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



limpio.
Dejar secar al aire.
Fijar con metanol 4-5 minutos y
decantar el exceso de metanol pasado
ese tiempo.
Dejar secar al aire.
Cubrir con Giemsa recién diluida
1/10 (5 gotas Giemsa por cada 45 de
agua destilada) durante 25 minutos.
Retirar exceso de colorante y lavar.
Dejar secar.
PMN Basófilo
PMN Neutróflo (arriba dcha) y
PMN Eosinófilo (abajo izqda)
Monocito
PMN Neutrófilo (arriba)
y linfocito (abajo)
Neutrófilo en cayado o en
banda
Monocito (arriba)
y linfocito (abajo)
 FUNDAMENTO
 Esta coloración es conocida como policromática debido
a que produce varios colores.
 Es una solución de alcohol metílico de un colorante
ácido (eosina) y otro básico (azul de metileno).
 El alcohol sirve como un fijador del frotis sanguíneo al
portaobjetos.
 El amortiguador, que consiste en una solución
tamponada, mantiene el pH del colorante y favorece la
mejor absorción por los diferentes componentes
celulares.
 MUESTRA: Sangre capilar por punción de un dedo, o
venosa procedente de punción venosa y anticoagulada
con EDTA.
 TINCIÓN:
 Colorante wright Eosina-azul de metilo 0.8g/l
Alcohol metílico
 Buffer Giordano pH 7
1l
 Realizar en una placa un extendido de la
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


muestra. Dejar secar.
Cubrir el portaobjetos con 1-2mL de
colorante wright
Tras 1 minuto añadir un volumen igual
de buffer giordano pH 7 soplar para
homogenizar hasta permitir que la
mezcla adquiera un brillo verde
metálico.
Dejar actuar de 3-6 minutos.
Lavar con agua corriente, dejar secar a
temperatura ambiente.
Leer al microscopio con objetivo 40x o
100x y aceite de inmersión.
Linfocito
Basófilo
Eosinófilo
Neutrófilo
 FUNDAMENTO
RECUENTO DE RETICULOCITOS: Son eritrocitos
no nucleados inmaduros, que contienen RNA y que
continúan sintetizando hemoglobina después de la
pérdida del núcleo.
• MUESTRA: sangre venosa , en casos excepcionales
sangre capilar. La técnica ha de realizarse a ser posible
antes de que transcurra 2 horas de la extracción, con
un máximo de 24 horas.
 TINCIÓN:
Azul de Cresil Brillante 0.5%
CLoruro de Sodio al 0.85% 99.5%
 Se mezcla en un tubo tres gotas de azul de cresil
brillante y tres gotas de sangre, se incuban durante 15
minutos a 37 grados, se hacen dos extendidos en lámina
y se miran con objetivo de 100 X.
 Se cuentan aproximadamente 1.000 hematíes y se saca
el promedio de reticulocitos.
 CÁLCULO:
Se realiza el recuento de reticulocitos en 10 campos, en
los cuales, haya aproximadamente 100 hematíes/campo.
 Seguidamente calculamos la proporción de
reticulocitos en dichos campos
 % Reticulocitos = nº de reticulocitos
observados X 100
 nº de hematíes contados
 ValORES DE REFERENCIA
Adultos
Recién nacidos
0.5 a 2%
3 a 6%
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