Cambios anatómicos durante
formación de raíces

Dediferenciación



Divisiones celulares iniciales


Grupos de células sin polaridad, simétricas, no
determinadas
Divisiones laterales para formar meristema radical
determinado


Formación de nuevos sitios meristemáticos
Marcado por división anticlinal
1500 células, simetría bilateral
Crecimiento y emergencia (división y alargamiento)


Unión vascular con tallo
Raíz es visible
Cambios fisiológicos durante
formación de raíces

Iniciación día 0 a día 3



Emergencia: día 3 a día 10





Divisiones anticlinales en periciclo
Depende de AIA del ápice de raíz primaria
Salida de raíces
Requiere de fuente diferente de auxina (ápice y hojas jóvenes)
Duplica la concentración en forma de pulso (alta conc/corto tiempo)
No ocurre si se decapita planta, si al adicionar auxina
Independencia


Crecimiento de raíz
Independiente de auxina de ápice y de raíz primaria
- Dosis discretas de auxina controlan el desarrollo de raíces
- Indica importancia de transporte
Clasificación de plantas de acuerdo
a facilidad de enraizamiento
 Fáciles
de enraizar
 Difíciles de enraizar
 Recalcitrantes





Ausencia de enzimas para conjugados
Ausencia de activadores
Presencia de inhibidores enzimáticos
Ausencia de sustratos fenólicos
Separación física de enzima
Criterios para selección de
enraizador
 Fácil

Disuelto en agua o alcohol
 Fácil

de preparar
y rápido de aplicar
Spray, inmersión, talco
 Rentable

(relación costo-beneficio)
Incremento en enraizamiento
 Efectivo
(alto porcentaje de
enraizamiento)
Por qué usar hormonas
 1)
incrementa el porcentaje de esquejes
que forman raíces
 2) acelera el enraizamiento
 3) mejora la calidad y cantidad de raíces
por esqueje
 4) mejora la uniformidad de las raíces
AIA vs AIB y ANA
 AIA
es degradado por AIA oxidasa, no AIB
o ANA
 Auxina sintéticas no son conjugadas, AIA
si.
 AIA es fotosensible, AIB y ANA no
 AIA degradado por actividad microbiana
 AIA solo se formula en forma ácida,
soluble en alcohol, puede causar quema
Presentación de hormonas



AIB o ANA
Presentaciones: Polvo, líquida o pura
Pura


Polvo: Hormodin, Hormo-Root, Rootone



Difícil de preparar (disolución)
Diferentes concentraciones
Usadas en plantas no leñosas o leñosas de fácil enraizamiento
Líquida: C-mone, Dip 'N Grow, Wood's Rooting Comp.


Concentración alta que se diluye
De mayor uso, y más efectivas en especies difíciles
Factores que afectan









Tipo auxina
Concentración de auxina
Modo de aplicación de auxina
Temperatura de solución de enraizador
Genotipo
pH de solución de enraizador
Tiempo de exposición al enraizador
Estado fisiológico del explante
Edad fenológica del explante
a. Tipo de auxina
b. Concentración de auxina
TE
ST
IG
2,
O
4
D
(1
,2
5
g/
2,
l)
4
D
(2
,5
g/
l)
2,
4
D
(5
g/
l)
2,
4
D
(1
0
g/
A
l)
IB
(1
,2
5
g/
l)
A
IB
(2
,5
g/
l)
A
IB
(5
g/
l)
A
IB
(1
0
g/
A
l)
NA
(1
,2
5
g/
A
l)
NA
(2
,5
g/
l)
A
NA
(5
g/
l)
A
NA
(1
0
g/
l)
# primordios radicales
Enraizamiento en Cordyline
60.00
Cordyline sp.
50.00
40.00
30.00
20.00
10.00
0.00
tratamiento
1
TE
ST
IG
2,
O
4
D
(1
,2
5
g/
2,
l)
4
D
(2
,5
g/
l)
2,
4
D
(5
g/
l)
2,
4
D
(1
0
g/
l)
A
IB
(1
,2
5
g/
l)
A
IB
(2
,5
g/
l)
A
IB
(5
g/
l)
A
IB
(1
0
g/
A
l)
NA
(1
,2
5
g/
l)
A
NA
(2
,5
g/
l)
A
NA
(5
g/
l)
A
NA
(1
0
g/
l)
apariencia
Escala de evaluación
4.0
3.5
2
3
Cordyline sp.
3.0
2.5
2.0
1.5
1.0
0.5
0.0
tratamiento
4
# de raíces
ANA en el enraizamiento de acodos de
D. deremensis var. Janet Craig
30
20
10
0
0
3000
4000
5000
ANA ppm
6000
7000
c. Metodos de Aplicación

Formulaciones en polvo
 Inmersión basal en solución diluida
20 a 500 ppm
 Inmersión rápida, solución concentrada
500 a 20.000 ppm





Herbáceas
Crisantemo
Estacas herbáceas
Estacas leñosas
Estacas difíciles
150 a 500 ppm
400 a 500 ppm
1.000 ppm
2.000 ppm
5.000 a 20.000 ppm
d. Temperatura de enraizador
e. genotipo
Efecto de la temperatura del sustrato sobre la concentración de IBA requerida para
alcanzar 100% de enraizamiento en estacas de Hbiscus cv. "Pink Versicolor"
Temperatura Sustrato
Concentración IBA
˚C
mg / L
18
8000
26
6000
34
2500
Carpenter y Cornell (1992)
Capacidad natural de enraizamiento de tres cultivares de Hibiscus rosa sinensis L teniendo en el sustrato una temperatura de 26˚C.
Cultivar
% Enraizamiento
Pink Versicolor
73
Jim Hendry
60
Silver Anniversary
41
Carpenter y Cornell (1992)
f. pH.
Número de raíces
Malus domestica
Var. Triple Red
Malus domestica
Var. Gala
Conclusiones
pH si afecta la acción de las
Auxinas
pH ácido es beneficioso, facilita
Movimiento de AIA a través de
membranas (transportadores)
Determinar efecto en cada cultivo
g. Estado de desarrollo del
APICE (AUXINA)
explante
RAIZ
 H.
Tipo de explante
i. Efecto de la época del año
j. Estado del esqueje
Varía según:
ambiente
tipo de planta
tipo de regulador
tipo de
k. Tipo de esqueje
Síntomas de Toxicidad
 Formación
excesiva de callo
 Muerte de base del esqueje
 Necrosis de tallo
 Amarillamiento y caída del follaje
 Inhibición del crecimiento aéreo y radical
 Epinastia
 Deformación en ápice
Causas para variabilidad de
enraizamiento
 Condiciones
ambientales y de nutrición de
la planta y de los esquejes
 Manejo de los esquejes luego de su
separación de la planta madre
 Concentración, método de aplicación y
tipo de sustancia reguladora
 Interacción entre sustancias RC
 Edad de los esquejes
Efecto de antagonistas de
auxinas (BA)
# primordios radicales
12.0
Cordyline sp.
10.0
8.0
6.0
BA inhibe y no
daña.
4.0
2.0
0.0
Testigo
BA (50 g/l)
BA (500 g/l)
tratamiento
4.0
Cordyline sp.
apariencia
3.0
2.0
1.0
0.0
Testigo
BA (50 g/l)
tratamiento
BA (500 g/l)
Descargar

Enraizamiento