Epidemiología y control de la
infección nosocomial por
microorganismos multirresistentes:
Papel de la Microbiología
Álvaro Pascual
UGC de Enfermedades Infecciosas y Microbiología
Hospital Universitario Virgen Macarena
Universidad de Sevilla
Microbiología e Infección
Nosocomial
1. Papel del microbiólogo
2. Papel del laboratorio de Microbiología
Principales funciones del
Microbiólogo
 …………………………..
 Participar con el máximo nivel de
responsabilidad en el control y prevención
de la IN y comunitaria.
 Implicarse en la política de uso racional de
antimicrobianos.
 Colaborar con los sistemas de vigilancia
epidemiológica y de salud pública.
 ………………………..
García Bermejo et al. EIMC 2010.
Composición de una comisión
de infecciones
Niveles de implicación
Servicios implicados
Principalmente
implicados
Microbiología, EEII, M.
Preventiva, Farmacia,
Esterilización
Cirugía, UCI,
Trasplantes/Oncología,
Neonatología,
Pediatría, M. Interna…
Direcciones gerencia,
médica y enfermería
Servicios donde la
infección es problema
grave
Órganos de dirección
García Bermejo et al. EIMC 2010.
Función del microbiólogo en la
vigilancia y control de la IN
 Comité de infecciones y política de
antimicrobianos.
 Equipo de control de la IN






Diseño de estrategias de vigilancia y control
Trabajo de campo
Cultivos de portadores
Cultivos ambientales
Control de reservorios
Formación continuada….
Papel del laboratorio de Microbiología
en la vigilancia y control de la IN (y de
la comunidad)
 Protocolos de recogida y procesamiento de muestras
diagnósticas y de control de infección
 Sistemas de identificación y sensibilidad. Nuevos
patógenos y fenotipos de resistencia.
 Pruebas de diagnóstico rápido
 Informes periódicos de incidencia de microorganismos
involucrados y sensibilidad a antimicrobianos.
 Protocolos de cultivos de vigilancia (portadores,
trabajadores sanitarios, ambiente, etc).
 Técnicas de tipificación molecular para investigar
brotes, reservorios, vías de transmisión.
 Almacenamiento de microorganismos
 Sistema de almacenamiento de datos, gestión de
datos y comunicación.
Niveles de Laboratorios: colaboración
(HGP = hospitales generales pequeños, HGG = hospitales generales grandes, GHR =
grandes hospitales de referencia, CRNH = centros de referencia no hospitalarios)
* al menos en situaciones de brotes
Análisis de evolución de
resistencias




Control de la infección nosocomial
Política de antimicrobianos
Evitar sobredimensionar resistencias
Criterios comunes con fines
comparativos.
Recomendaciones generales para elaborar el
informe acumulado de susceptibilidad
antimicrobiana.
 Realizarlo y presentarlo por lo menos 1 vez al año
 Incluir especies con al menos >30 aislados/año
 Para calcular los porcentajes de resistencia, utilizar los
puntos de corte vigentes ese año y analizar el impacto
de los cambios introducidos en los comentarios del
informe.
 Incluir sólo resultados de muestras clínicas (descartar los
resultados de colonización o de vigilancia)
 Incluir sólo el primer aislado de cada paciente
 Incluir sólo los resultados de antibióticos que se
informan de forma rutinaria, descartar los que se utilizan
para identificación o para detección de fenotipos de
resistencia
 Calcular el porcentaje de sensibles y descartar el
porcentaje de aislados con sensibilidad intermedia
Fuentes: CLSI, ESCMID, SEIMC
Recomendaciones específicas del M39-A2
para la elaboración del informe acumulado
de susceptibilidad antimicrobiana
Microorganismo
Recomendación
Streptococcus pneumoniae


Calcular el porcentaje de sensibles y con sensibilidad
intermedia a la penicilina
Calcular el porcentaje de sensibles a
cefotaxima/ceftriaxona usando los puntos de corte
para meningitis y para cuadros no meníngeos
Estreptococos gr. viridans

Calcular el porcentaje de sensibles y con sensibilidad
intermedia a la penicilina
Staphylococcus aureus

Calcular los porcentajes de sensibilidad de forma
separada el subgrupo de aislados resistentes a
meticilina
Fuente: CLSI
Fenotipos de resistencia que deben ser confirmados
Microorganismo
Fenotipo
A) Fenotipos novedosos (no descritos o detectados en casos esporádicos)
S. pyogenes
PenicilinaR o cefalosporinas 3ª generaciónR
S. pneumoniae
VancomicinaR o linezolidR
L. monocytogenes
AmpicilinaR o gentamicinaR
N. meningitidis
Cefalosporinas 3ª generaciónNS o carbapenémicosNS
H. influenzae
Cefalosporinas 3ª generaciónR
B) Fenotipos poco frecuentes hasta la fecha
Enterobacterias
Productores de BLEE e inhibidores de BLR
CarbapenémicosR (excepto Proteus/Morganella spp)
S. enterica Typhi
Cefalosporinas 3ª generaciónR
A. baumannii
Colistina/polimixinaR
P. aeruginosa
Colistina/polimixinaR
S. maltophilia
CotrimoxazolR
H. influenzae
Amoxicilina/clavulánicoR o fluorquinolonasR
N. meningitidis
PenicilinaR de alto nivel
N. gonorrhoeae
Cefalosporinas 3ª generaciónNS
S. pneumoniae
PenicilinaR de alto nivel
S. aureus
VancomicinaR de alto nivel, linezolidR, daptomicinaR
SCN
LinezolidR
Enterococcus
LinezolidR
E. faecalis
PenicilinaR de alto nivel
Strain/Plasmid
Mutations
CLSI
EUCAST
E. coli ATCC 25922-S83L-S80R
GyrA Ser83Leu,
ParC Ser80Arg
S
S
E. coli ATCC-S83L-S80R/qnrA
GyrA Ser83Leu,
ParC Ser80Arg
I
R
E. coli ATCC-S83L-S80R/qnrB
GyrA Ser83Leu,
ParC Ser80Arg
S
R
E. coli ATCC-S83L-S80R/qnrS
GyrA Ser83Leu,
ParC Ser80Arg
I
R
Microorganismos centinela
 Monitorización periódica de
microorganimos centinelas:
 No existen recomendaciones
 Epidemiología local
 Información de ámbito nacional (brotes,
importación de nuevos mec., etc)
 Disposiciones locales, autonómicas o
nacionales.
 Frecuencia de comunicación: alerta,
monitorización o impacto de intervención
Grupos de microorganismos
centinelas mas frecuentes (1)
Microorganismo
Característica
A) Bacterias multirresistentes
Klebsiella/Enterobacter spp
Productor de BLEE/carbapenemasa
P. aeruginosa
Productor de carbapenemasa
A. baumannii
CarbapenémicosR
S. aureus
MeticilinaR, glicopéptidosI/R, linezolidR
SCN
GlicopéptidosR, linezolidR
E. faecalis/E. faecium
GlicopéptidosR
S. pneumoniae
PenicilinaR alto nivel, C3GR
M. tuberculosis
IsoniacidaR+rifampicinaR
Grupos de microorganismos
centinelas mas frecuentes (2)
B) Patógenos de posible adquisición nosocomial de persona a persona
C. difficile
Toxigénico
Norovirus, astrovirus
Adenovirus
Serotipo 8 y 19
RSV, virus influenzae
VIH, HBV, HCV
C) Patógenos de adquisición de fuente ambiental
Aspergillus spp
Legionella pneumophila
Micobacterias
D) Otros
B. cepacia
S. Maltophilia
Especies de crecimiento rápido
Nuevos métodos en Microbiología
Métodos de detección rápida de
microorganismos centinela
Microorganismo
Método
Muestra
Detección de antigeno
Virus respiratorios (VRS, influenza)
ELISA de membrana
Inmunocromatografía
Aspirado nasofaríngeo
Toxina de C. difficile
ELISA
Inmunocromatografía
Heces
Virus entéricos (Norovirus, astrovirus)
ELISA de membrana
Inmunocromatografía
Heces
L. pneumophila ser. 1
Inmunocromatografía
Orina
pbp2´ de S. aureus meticilina resistente
Aglutinación de latex
Cultivo de S. aureus
Detección de ácidos nucleicos
mecA y SCC de S. aureus meticilin resistente
Multiplex PCR en tiempo real
Frotis nasal
Productores de BLEE y carbapenemasas
Microarray
Múltiples determinantes de resistencia (vanB y
vanA, mecA)
Multiplex PCR en tiempo real
Multiplex PCR e hibridación
Sangre
Toxina de C. difficile
PCR en tiempo real
heces
cultivo positivo
Estudios de portadores. SARM
A favor
En contra

El análisis de muestras clínicas sólo 
detecta 50-70% de los portadores de
MRO y es necesario reducir el 90% de
las transmisiones para tener impacto
en la reducción de las infecciones
Deberían utilizarse sólo en caso de
brotes,
cuando
las
medidas
universales
de
prevención
de
infecciones han fallado

Evidencia científica que la detección 
de portadores es beneficioso en la
reducción de la infección tanto en
brotes como
La mayoría de los estudios tienen una
calidad limitada y no incluyen grupos
control sin detección activa

Estas reducciones de la incidencia han 
ocurrido sólo en instituciones con alta
prevalencia de MRO
Existe evidencia de reducción de la
tasa de infecciones por SARM sin
incluir la vigilancia activa de portadores

Son menos costosas que los casos de 
infección por SARM que se evitan
Son costosas porque hay que incluir el
coste de la técnica, personal del
laboratorio, transporte, administración.
Estudios de portadores




¿Qué
¿Qué
¿Qué
¿Qué
microorganismos?
grupo de pacientes?
tipo de muestra?
tipo de técnica?
Métodos disponibles para
estudios de portadores. MRSA
Basados en cultivo
Técnicas
moleculares
Microorganismo
Medio de cultivo
S. aureus meticilinaR
No cromogénicos

Agar manitol-sal + 4-6 mg/l oxacilina

Agar MH + 4% ClNa + 4-6 mg/l oxacilina
Cromogénicos

ORSAB (Oxoid)

MRSA select (Biorad)

ChromID MRSA (Biomérieux)

BBL CHROMagarTM MRSA II (BBL)

HardyCHROM MRSA (HardyDiagnostics)

CHROMagar MRSA (CHROM agar Microbiology)

Brilliance MRSA (Oxoid)

Chromatic MRSA (Liofilchem)
Microorganismo
Técnica
S. aureus meticilinaR
GenoType MRSA Direct (Hain Lifescience)
BD GeneOhm MRSA real-time PCR assay (BBL)
Cepheid Xpert MRSA assay (Cepheid)
Coste-eficacia en estudios de
portadores de SARM. HUVM. Sevilla
 Prevalencia de SARM en 2010 HUV
Macarena (<15%)
 23% de PCR-TR de SARM tenían
cultivo con SASM.
 Se cambió la PCR-TR por medio
cromogénico.
 Ahorro anual : 50.000€ (93%)
Obviedad en estudios de
vigilancia y control de IN
¿Para qué quieres aplicar técnicas
rápidas si no tienes un equipo
de control de la infección
nosocomial eficiente?
No pidas aquella determinación
que en caso de ser positiva no
sabes lo que significa
Métodos moleculares e IN
 Identificación de microorganismos
resistentes
 Detección de mecanismos de R:




Genes de resistencia
Elementos móviles (integrones, Plasmidos,...)
Regiones promotoras
Genes reguladores
 Tipificación molecular.




PCR (Rep-PCR,...)
PFGE
MLST
Secuenciación
Técnicas de tipado
Secuencias
repetidas
REP-PCR
Ribotipia
DiversiLab
• 1 día
• Díficil estandarización
• No normalización
PFGE
• Todo el cromosoma
• Cualquier especie
• Alta discriminación
• Difícil estandarización
• Permite normalización
• 3 días
Secuenciación
MLST
MLVA
VTNR
PFGE
Suspensión bacteriana
Introducción en
bloques de agarosa
Lisis enzimática
Digestión enzimática
Electroforesis en campo pulsante
Fotografía del gel
Análisis del resultado
Técnicas de tipado molecular
 Permiten comparar el genoma de varios aislados
….GG CC….
….CC GG….
….GA CC….
….CT GG….
1 mutación=1 cambio genético
Aislado A
Aislado B
Técnicas de tipado:
comparación
Relación del 78%
Técnicas de tipado:
comparación
Perfiles idénticos
Ejemplos prácticos en el HUVM
 Episodio 1: Búsqueda de reservorio
 Episodio 2: Importancia del determinante
de resistencia
 Episodio 3: Transmisión vs pseudobrote
de SARM
Episodio 1: búsqueda del
reservorio
 UCI adultos año
2010
Paciente
Fecha
Cama
Muestra
A
23 julio
6
A. bronquial
SARM+
B
27 julio
2
A. bronquial
SARM+
2 pacientes con NAV
Episodio 1: búsqueda del
reservorio
 Situación basal: no había casos anteriores de SARM
en la UCI en 2010
Ingreso
Paciente A
Cama 6
A. bronquial
SARM
?
F. nasal
no realizado
Ingreso
F. nasal
negativo
Paciente B
Cama 2
16
22
23
26
Episodio 1: búsqueda del
reservorio
 Cuestiones que se plantean:
 ¿Es el mismo microorganismo?
 ¿Se ha podido transmitir entre los dos
pacientes?
 El caso B: ¿Puede ser un falso positivo?
 ¿Existen otros pacientes portadores en la
unidad?
 ¿Existen portadores sanitarios?
Episodio 1: búsqueda del
reservorio
 Actuaciones del equipo de infección
nosocomial:
 Aislamiento de los dos casos
 Limpieza terminal de áreas comunes
 Búsqueda de portadores en todos los pacientes
 Búsqueda de portadores en todo el personal
Episodio 1: búsqueda del
reservorio

Pacientes
Todos negativos

Trabajadores (71)
1 frotis nasal positivo
Se había utilizado el mismo en
los 2 casos. No cultivo
Dice (Opt:0.60%) (Tol 1.0%-1.0%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]

Fibrobroncoscopio
100
PFGE
90
80
PFGE
Caso
Muestra
A 956
A. traqueal
957
B
A. traqueal
961
Trabajador F. nasal
Episodio 1: RESULTADOS
 Transmisión cruzada entre los 2 pacientes
(fibrobroncoscopio?)
 Fallo en el protocolo de detección precoz del 1er caso
 El trabajador sanitario “no está relacionado”
ACTUACIONES
1) Descolonización del trabajador
2) Formación sobre la limpieza y desinfección del fibrobroncoscopio
3) Control microbiológico del reprocesado de endoscopios
4) Reforzamiento de las muestras de control al ingreso en UCI
Episodio 2: importancia del
determinante de resistencia
Agosto 2005-febrero 2006
32% de los pacientes colonizados
9 sepsis
Colonized
Bacteremia
J Hosp Infect 2009; 73: 159-163
Epidemiological and environmental study of an
outbreak caused by a carbapenemase-producing K.
oxytoca.
Infected/colonised patients
Sink removal
Sep 10th, 2010
Positive date
Death date
ICU stay
Sink 1 cultures
Sink 2 cultures
Positive culture
Negative culture
Sink removal
Feb 25th, 2011
MC Domínguez et al. Poster K-237. ICAAC 2011
Episodio 3: transmisión vs
pseudobrote


En Traumatología 2006-2011: 22 pacientes
con infecciones postquirúrgicas
Se disponía de 19 aislados conservados
¿Existe transmisión
postquirúrgica en el
Servicio de
Traumatología?
HIPÓTESIS
¿Los pacientes estaban
colonizados antes de la
cirugía?
Episodio 3: transmisión vs
pseudobrote
clones
11 perfiles
Episodio 3: transmisión vs
pseudobrote
 11 perfiles diferentes:
 10 perfiles relacionados con clones del hospital
estudiados en años anteriores
 E2 el grupo mayor (4 casos)
 Se revisaron los antecedentes
epidemiológicos en los 2 grupos mayores del
hospital
 E2: 4/6 pacientes
 E5: 7/16
Antecedente previo
La misma consulta
Episodio 3: Resultados
 Pacientes con colonización previa a la
intervención
 Revisar el protocolo de preparación
del paciente
 Actuaciones en las consultas del área
Conclusiones
 Establecer la relación clonal es una herramienta útil
para la planificación de intervenciones de control
 A corto plazo: actuaciones iniciales
 A largo plazo: búsqueda de reservorios ocultos
 El estudio comparativo entre aislados debe ir
acompañado de un análisis de los determinantes de
resistencia
 Es necesario establecer una base de datos histórica
de datos epidemiológicos, microbiológicos y
moleculares
 Equipo de control de IN multidisciplinar y proactivo.
Mantenimiento de baja incidencia de
infecciones producidas por patógenos
multirresistentes en un hospital terciario
Hospital Universitario
Virgen Macarena, Seville
Jesús Rodríguez-Baño, Lola García-Ortega, Lorena López-Cerero, Carmen Lupión,
Mariola Alex, Carmen González, María D. del Toro, Julio López, Encarnación Ramírez,
Miguel A. Muniain, Alvaro Pascual
Unidad Clínica de Enfermedades Infecciosas y Microbiología.
Hospital Universitario Virgen Macarena, Sevilla
Spanish Network for Research in Infectious Diseases (REIPI)
Método (III)
Flujo de trabajo
Microbiología
Feed-back
Enfermería de IN
Enfermedades Infecciosas
Procedimientos
Detección diaria de casos
Mantenimiento aislados
Identificación molecular
Datos epidemiológicos
Precauciones de contacto
Limpieza ambientas
Refuerzo de medidas de control
Coordinación
Consejo clínico y seguimiento
Decolonización si es posible
Refuerzo de medidas de control
SARM
Resultados
0,9
0,8
Cases per 1,000 patient-days
0,7
<15%
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
Infect Control Hosp Epidemiol 2010; 31: 786-95
2010
2009
2008
2007
2006
2005
2004
2003
2002
2001
2000
1999
1998
1997
1996
0
1995
0,1
Am J Infect Control 2009; 37: 715-22
2010
2009
2008
2007
2006
2005
2004
2003
2002
2001
2000
1999
1998
1997
1996
1995
1994
Cases per 1,000 patient-days
A. baumannii
Resultados
0,9
0,8
0,7
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
0
Am J Infect Control 2009; 37: 715-22
2010
2009
2008
2007
2006
2005
2004
2003
2002
2001
2000
1999
1998
1997
1996
1995
1994
Cases per 1,000 patient-days
A. baumannii
Resultados
0,9
0,8
0,7
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
0
Years
0,12
0,1
0,08
0,06
0,04
0,02
0
Tasa,Hosp. Univ. V. Macarena
2010
2009
2008
2007
Years
2006
ESBL-K. pneumoniae
2005
2010
2009
2008
2007
2006
2005
0
2004
0,1
2004
0,2
2003
0,3
2003
0,4
2002
0,5
Cases per 1,000 patient-days
0,6
2002
2010
2009
2008
2007
2006
2005
2004
2003
2002
Cases per 1,000 patient-days
MRSA
Cases per 1,000 patient-days
2010
2009
2008
2007
2006
2005
2004
2003
2002
Cases per 1,000 patient-days
Resultados
A. baumannii
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
0
Years
ESBL-E. coli
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
0
Years
Media en Hospitales de Andalucía
Conclusiones
 El desarrollo de un programa específico de control de
infecciones dirigido a detectar y evitar la transmisión de
bacterias MR se asoció con una disminución significativa y
mantenida de las tasas de SARM y A. baumannii
nosocomial.
 Las tasas de P. aeruginosa mulrirresistente y K.
pneumoniae productor de BLEE se mantuvieron a niveles
muy bajos.
 Los brotes fueron rapidamente detectados y controlados. La
identificación molecular “en tiempo real” ha sido una
herramienta indispensable.
 No se detectó transmisión de VRE, de enterobacterias y/o
P. aeruginosa productoras de carbapenemasas.
 El principal problema actual es la entrada de E. coli
productor de BLEE desde la comunidad a los hospitales
Laboratorio de Referencia para tipado molecular de
patógenos nosocomiales y detección genotípica de
mecanismos de resistencia a antimicrobianos de interés
sanitario en Andalucía
Programa PIRASOA
UGC Intercentros de Enfermedades Infecciosas, Microbiología
Clínica y Medicina Preventiva
Hospital Universitario Virgen Macarena. Sevilla
Antecedentes
1. Reconocimiento como laboratorio de
referencia (UPRA) en noviembre de
2013.
2. Finalidad: tipado molecular de
bacterias MR y ofrecer información
relevante en tiempo real para el
control de brotes producidos por
bacterias MR.
Objetivos (I)

Servir de apoyo al Programa PIRASOA en la
detección, investigación y control de brotes por
bacterias MR. Apoyo a SVEA.

Determinar la relación clonal de los aislamientos
de patógenos nosocomiales MR mediante la
combinación de pruebas fenotípicas y
genotípicas en tiempo suficiente para poder
tomar medidas de control adecuadas.

Estudio fenotípico y genotípico de los
mecanismos de resistencia de patógenos
nosocomiales de interés y que puedan favorecer
el desarrollo de medidas terapéuticas y/o
preventivas.
Objetivos (II)

Identificación y seguimiento de clones de
microorganismos MR que circulen en centros
hospitalarios de la Comunidad.

Creación de una base de datos con los genotipos
de interés.

Servir de centro centinela para la detección de
nuevos mecanismos de resistencia en
patógenos nosocomiales o de la comunidad.
Cartera de Servicios (I)
Resistencia a antimicrobianos
• Detección de resistencia
Staphylococcus aureus.
a
oxacilina
(SARM)
en
• Detección de resistencia a vancomicina en Enterococcus spp.
• Detección e identificación de genes de beta-lactamasas de
espectro extendido (BLEE) tipo TEM, SHV y CTX-M, más
frecuentes en nuestro entorno, en enterobacterias.
• Detección e identificación de genes de AmpC plasmídicas y
cromosómicas.
• Detección e identificación de genes de beta-lactamasas que
hidrolizan carbapenems (carbapenemasas).
Perfiles de la
base de datos
de Andalucía
PFGE
Normalización
Comparación con perfiles
previos
MLST
Nuevos aislados
Comparación con previos
October 2013-Marzo 2015
218 Aislados
21 Hospitales
75 Informes
2014 y 1er Trimestre de 2015
Microorganismos
No.
Determinantes de resistencia
Enterobacteriaceae
K. pneumoniae
106 38 KPC-3; 8 OXA-48; 26 OXA-48+CTX-M15; 12 CTX-M-15; 1 CTX-M-14; 10 SHV
gr; 1 hiper TEM-1; 10 CIT gr
K.oxytoca
1
K1
Enterobacter spp
5
AmpC+pérdida de porinas
E. coli
8
4 OXA-48
C. freundii
2
1 IMP-1; 1 VIM-1
A. baumannii
77
47 OXA-23; 20 OXA-58; 10 OXA 24/40
P. aeruginosa
13
AmpC
B. cepacia
5
Otros Gramnegativos
Grampositivos
S. aureus
1
mecA
Hospitales 2014
Centro
H Virgen de la Victoria
H San Cecilio
H Reina Sofía
H alto Guadalquivir de Andujar
H Carlos Haya
H Virgen Macarena
H Costa del Sol
H de Jerez
H de la Línea
H Virgen de las Nieves
HARE de Puentegenil
H de Valme
H San Juan de Dios de Aljarafe
HARE del Valle del Guadiato
H de Huercal Overa
H de Montilla
H Serranía de Málaga
H Virgen del Rocío
H de Pozoblanco
H de Riotinto
H de Alcalá la Real
Nº de
aislados
32
27
22
14
9
8
7
7
5
5
4
3
3
3
2
2
2
1
1
1
1
Nº
episodios
9
2
2
6
3
3
2
1
1
3
1
2
2
1
2
1
2
1
1
1
1
Media
aislados/envio
3,6
13,5
11
2,3
3,0
2,7
3,5
7
5
1,7
4
1,5
1,5
3
1
2
1
1
1
1
1
K. pneumoniae ST512 productora de KPC3
agosto 2012
Córdoba
Transfer de Italia
Abril, 2013
Cabra
Febrero, 2014
Montilla
Abril, 2014
Pozoblanco
Mayo, 2014
Sevilla
Mayo, 2014
Jerez
Agosto, 2014
Alcala la Real
Agosto, 2014,
Peñarroya-Pueblonuevo
Diciembre, 2014
Puente Genil
Febrero, 2015
Andujar
95% similitud
Dice (Opt:0.60%) (Tol 1.2%-1.2%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
100
95
PFGE
90
85
PFGE
2014082
.
KPC-3
.
11/03/14
. de Jerez
H
2014114
.
KPC-3
.
29/08/14
. Valle del Guadiato
H
2014061
.
KPC-3
.
11/03/14
. Reina Sofia
H
2014069
.
KPC-3
.
01/04/14
. Reina Sofia
H
2014083
.
KPC-3
.
12/05/14
. de Jerez
H
2014084
.
KPC-3
.
16/05/14
. de Jerez
H
2014113
.
KPC-3
.
28/08/14
. Valle del Guadiato
H
2014115
.
KPC-3
.
30/09/14
. Valle del Guadiato
H
325/#1
.
KPC-3
.
01/08/12
H Reina Sofia
327/#1
.
KPC-3
.
02/08/12
H Reina Sofia
40447
.
KPC-3
.
03/02/14
H Montilla
262
.
KPC-3
.
27/06/12
H Reina Sofia
281
.
KPC-3
.
10/07/12
H Reina Sofia
266
.
KPC-3
.
28/06/12
H Reina Sofia
268
.
KPC-3
.
28/06/12
H Reina Sofia
278
.
KPC-3
.
06/07/12
H Reina Sofia
2014100
.
KPC-3
.
06/08/14
. Alcala la Real
H
40185
.
KPC-3
.
04/02/14
H Montilla
CA-6390/#1
.
KPC-3
.
29/04/13
H Infanta Margarita
CA-12539/#1 KPC-3
.
.
25/07/13
H Infanta Margarita
2014073
.
KPC-3
.
10/04/14
. Reina Sofia
H
2014079
KPC-3v
.
16/05/14
. San Lazaro
H
2014080
KPC-3v
.
13/05/14
. San Lazaro
H
2014065
.
KPC-3
.
19/03/14
. Reina Sofia
H
Primeros
aislados 2012
Nuevo perfil en
marzo 2014
K. pneumoniae ST405 productor de CTX-M-15
Dice (Opt:0.60%) (Tol 1.2%-1.2%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
100
90
80
PFGE
70
60
PFGE
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
CTX-M-15
. Reina Sofia
H
.
OXA-48+CTX-M-15
. La Paz
H
.
OXA-48+CTX-M-15
. La Paz
H
Brote de
Neonatología
2013
Aislados 2014
Brote Hospital La
Paz de Madrid
K. pneumoniae productor de OXA-48+CTX-M-15
2012-2014
H Virgen Macarena
H San Lázaro
H San Juan de Dios
2012-2014
H Virgen de la Victoria
H Carlos Haya
2014
H Puerta del Mar
H de Jérez
2012-2014
H Reina Sofia
K. pneumoniae
productor de OXA48+CTX-M-15
febrero-abril, 2014
H San Cecilio
OXA-23 ST2
A. Baumannii resistente a
febrero-julio, 2014
carbapenems
H Andujar
junio, 2014
H San Juan de Dios
OXA-23
julio-diciembre, 2014
H Virgen de la Victoria
OXA-23
diciembre, 2014
H Virgen Macarena
OXA-23
marzo, 2015
H Alto Guadalquivir
OXA-23
OXA-58
Enero, 2015
H San Juan de Dios
OXA-24/40
febrero, 2015
H Virgen Macarena
OXA-24/40
marzo, 2014
H Costa de Sol
OXA-58
Marzo, 2015
H Regional Malaga
OXA-58
A. baumannii. Transmisión entre centros
hospitalarios
Dice (Opt:1.00%) (Tol 1.2%-1.2%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
100
90
PFGE2
80
70
PFGE2
.
01/12/14
.
OXA-23
H VIRGEN DE LA VIC.
.
04/03/15
.
OXA-23
H SAN JUAN DE DIOS
.
13/06/14
.
OXA
24/40
H SAN JUAN DE DIOS
.
20/01/14
.
OXA-23
H VIRGEN MACARENA
.
22/07/14
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
03/03/15
.
OXA
24/40
H SAN JUAN DE DIOS
.
05/02/14
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
20/01/15
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
01/04/14
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
04/03/15
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
11/06/14
.
OXA-23
H SAN JUAN DE DIOS
.
29/01/15
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
02/02/15
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
27/01/15
.
OXA
24/40
H SAN JUAN DE DIOS
.
27/01/15
.
OXA
24/40
H SAN JUAN DE DIOS
.
03/02/15
.
OXA
24/40
H VIRGEN MACARENA
.
19/02/14
.
OXA-58
H COSTA DEL SOL
.
11/03/14
.
OXA-58
H COSTA DEL SOL
.
25/03/14
.
OXA-58
H COSTA DEL SOL
.
18/02/14
.
OXA-58
H DE ANDUJAR
.
04/07/14
.
OXA-58
H DE ANDUJAR
.
02/03/2015
.
OXA-58
H CARLOS HAYA
.
03/03/2015
.
OXA-58
H CARLOS HAYA
.
26/12/14
.
OXA-23
H VIRGEN DE LA VIC.
.
08/01/15
.
OXA-23
H VIRGEN DE LA VIC.
.
24/03/14
.
OXA-23
H SAN CECILIO
.
01/03/14
.
OXA-23
H SAN CECILIO
.
20/03/15
.
OXA-23
H DE ANDUJAR
.
23/03/15
.
OXA-23
H DE ANDUJAR
.
27/08/14
.
OXA-23
H VIRGEN DE LA VIC.
.
06/08/14
.
OXA-23
H VIRGEN DE LA VIC.
Unidades de Gestión de Enfermedades
Infecciosas y Microbiología Clínica
Unidades de Gestión de Enfermedades
Infecciosas y Microbiología Clínica
J. Antimicrob. Chemother 2011
Agradecimientos
 Equipo de Infección nosocomial
 Enfermería: L García, C Lupión, C González, C
Romero, M Alex, C Garcia-Briz
 Microbiología: L López-Cerero, L. Serrano
 Medicina Preventiva: J López
 Enfermedades Infecciosas: MD del Toro, J.
Rodríguez Baño
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