Parásitos en los productos de la
pesca y acuicultura
Protozoos de interés económico
Sub-reino Protozoa
-Phyla:
• Sarcomastigophora
• Apicomplexa
• Microspora
• Myxozoa
• Ciliophora
Sarcomastigophora
• Mastigophora (Flagelados):
– Trypanosoma- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre).
– Trypanoplasma- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre).
– Cryptobia- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre). C.
salmositica (truchas y salmones del género Oncorhyncus, carpas,
tencas, ... )
– Ichthyobodo (Costia). Monoxeno.
– Hexamita y Spironucleus. Monoxeno. Intestino y vesícula biliar.
Sarcomastigophora: Mastigophora (Flagelados)
2
1
• Ichthyobodo (Costia) necatrix
Sección histológica de las agallas de un pez
con una fuerte infección por Ichthyobodo (Costia).
Los parásitos, piriformes, se hallan unidos al epitelio
de la agalla, alimentándose del contenido celular.
– Parásito monoxeno de peces de agua dulce.
– Fase de vida libre (arriñonada u oval) y
fases parásita (piriforme).
– Se fijan al epitelio a través de un disco adhesivo en el que está el citostoma, alimentándose del
contenido celular
– Producen la “enfermedad de la turbidez de la piel”: velo blanquecino en agallas y piel, anorexia
aguda, lesiones, sobre todo en la aleta caudal, y muerte repentina.
– Asociado a nutrición deficiente, alta densidad de peces y baja calidad del agua (pH, temperatura,
partículas, ...).
– En peces sanos y/o adultos no es dañino. Pero es peligroso en alevines, peces con daños traumáticos
o con infecciones previas u otras enfermedades debilitantes. Importante en piscifactorías.
– Diagnóstico microscópico.
– Profilaxis: Mantenimiento de unas condiciones óptimas del agua y una buena alimentación.
– Tratamiento: Baños en solución de formalina (250 ml/m3, 30 min), de ClNa (1-1,5 g/L, 20-30 min) o
de acriflavina (10 mg/L, 10 h). Y, siempre, cambio de tanque de cría.
Fuente vídeo: http://www.fishdoc.co.uk/video/fishmovies.htm
Fuente foto 1: http://www.dekoi.info/afbeeldingen/costia.jpg
Fuente foto 2: http://www.fishdoc.co.uk/disease/costia.htm
Sarcomastigophora
• Sarcodina (Amebas):
– Acanthamoeba polyphaga (intestino, peritoneo
y agallas) => Ulceraciones en la córnea =>
ceguera en hombre.
– Schizamoeba (estómago e intestino)
Apicomplexa
• Perkinsiosis (enfermedad de dermo)
– Perkinsus spp. Muy importante en moluscos.
• Coccidiosis
– Eimeria subepithelialis. Coccidiosis nodular, en
intestino. No grave.
– Eimeria carpelli. Enterococcidiosis. Más
grave. Destrucción de la mucosa intestinal.
Pérdida de peso.
Microspora
• Parásitos obligados intracelulares. Sin mitocondria,
peroxisomas ni aparato de Golgi.
• Transmisión por esporas muy pequeñas, de pared doble,
ingeridas por el hospedador.
• La espora eclosiona, en respuesta a estímulos externos, y
everte un tubo polar hueco (filamento polar) que permite
el paso del esporoplasma al interior de la célula
hospedadora.
• Reproducción asexual en el citoplasma de la célula
hospedadora: esquizogonia y esporogonia.
Microspora
Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlin..
Microspora:
La espora
Fuente:
http://www.palaeos.com/Eukarya/Units/Microsporidia/Microsporidia.000.html
Esporas típicas de Tetramicra brevifilum
Fuente:
http://www.mispeces.com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas.pdf
Microspora
Fuente:http://www.cdfound.to.it/HTML/bie1c.htm
Microspora
Lesión producida por Glugea anomala.
Sección histológica de un intestino de rodaballo
donde se observa un xenoma de Tetramicra brevifilum.
Fuente: http://www.mispeces.com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas.pdf
Fuente: http://www.abo.fi/instut/fisk/Fin/Parasiter/microspora.htm
•
•
•
•
•
•
Microspora
Glugea
Nosema
Loma
Spraguea
Ichthyosporidium
Pleistophora
•
•
•
•
•
Tetramicra
Microgemma
Thelohania
Microsporidium
Heterosporis
cysts: xenomas
Se ha sugerido que los peces
podrían actuar como fuente de
infección humana por especies del
género Pleistophora.
http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol2issue1.htm
Myxozoa
• Parásitos de invertebrados y vertebrados poiquilotermos.
• Presentan esporas multicelulares con una pared formada por 1 ó 2
valvas, generalmente, que a veces tienen largas protuberancias.
• Las esporas se desarrollan en plasmodios (panesporoblasto) que
contienen de 1 a 6 cápsulas polares con filamentos polares enrollados.
• Cuando las esporas son ingeridas por el hospedador, se unen a la
pared intestinal por medio de los filamentos polares, descargando los
esporoplasmas que atraviesan dicha pared, se dividen por mitosis y
migran a diversos órganos del hospedador.
• Cuando las esporas no son ingeridas, pueden entrar en contacto con la
piel del pez, inyectando, por medio de los filamentos polares, los
esporoplasmas que se dividen por mitosis y migran a distintos órganos
del hospedador.
Myxozoa
Ciclo de vida de
Myxobolus (Myxosoma) cerebralis
trucha
gusano tubifícido (anélido), ej. Limnodrilus
Fuente: http://en.wikipedia.org/wiki/Image:Fdl17-9-grey.jpg
Fase de triactinomyxon
en M. cerebralis
CY, citómero;
N, núcleo;
P, célula pericítica;
PF, filamento polar;
PK, cápsula polar;
S, célula esporogónica;
SP, esporoplasma;
V, valvas de la espora.
Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlín.
Myxozoa
Ciclo epidemiológico de
Myxobolus cerebralis
trucha
gusano tubifícido, ej. Limnodrilus
Fuente: http://en.wikipedia.org/wiki/Image:LifeCycle%28Myxobolus_cerebralis%29.jpg
Myxozoa. Myxobolus cerebralis: agente etiológico de la
enfermedad del torneo en truchas y salmones
2
Sintomatología
•
•
•
•
Giros en círculo.
Ennegrecimiento región caudal.
Deformación dorso, mandíbulas y cabeza.
Alta mortalidad en peces jóvenes.
1
Fig. 1. Jaw deformity resulting from juvenile
infection by Myxobolus cerebralis.
Ennegrecimiento de la cola en una trucha arcoiris
Deformación de la mandíbula inferior en una trucha arcoiris
Deformación de la cola en una trucha de arroyo
Imágenes 1 y 2 tomadas de
http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol1issue2.htm
3
This image (3) is scanned from the collection of Dr. Thomas L. Wellborn, Jr.
The collection was donated to the US Fish & Wildlife Service in 1999.
http://en.wikipedia.org/wiki/Image:Deformed_Brook_Trout.jpg
Myxozoa. Myxobolus cerebralis
Diagnóstico
•
•
•
•
Signos clínicos: Diferenciar de dieta deficiente en triptófano y ácido ascórbico y de
contaminación del agua con tóxicos.
Cortes histológicos: demostración de esporas en cartílago.
Detección de anticuerpos por técnicas inmunológicas.
PCR
Tratamiento, prevención y
control en acuicultura:
Espora: Ø 8-10 µm
-Estanques de cemento (no de
tierra para evitar los anélidos)
-Conducciones de material
plástico resistente (evitar
entrada de anélidos)
-Desinfección periódica de las
instalaciones y del agua
(filtración, cloración, UV)
-Tratamiento de los peces con
fumagilina , ...
-Empleo de cepas de peces más
resistentes a las infecciones
A photomicrograph of the histological changes caused by Myxobolus cerebralis infection of salmonid cartilage,
stained with Giemsa. From the collected images of Dr. Thomas L. Wellborn, Jr.
http://en.wikipedia.org/wiki/Image:Whirling_disease_pathology.jpg
Otros Myxozoa
Xenomas producidos por infección con Myxobolus subtecalis
http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol4issue8.htm
Agalla de un lucio con xenomas que contienen millones
de esporas de Henneguya.
http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol4issue5.htm
•
•
•
•
Myxobolus
Kudoa
Henneguya
Myxidium leei
Esporas típicas de Myxidium leei
Sección histológica de un intestino de dorada
gravemente infectado por Myxidium leei
Fuente: http://www.mispeces.com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas.pdf
Ciliophora
• Ichthyophthirius multifiliis – Ich de agua
dulce
• Cryptocarion irritans – Ich marino
• Trichodina y Trichodinella – Trichodiniasis
• Apiosoma y Epistylis – Enfermedad del
alevín
• Chilodonella – Chilodonelliasis
Ciclo de vida de Ichthyophthirius multifiliis
Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlín.
Fuente de los vídeos:
http://www.fishdoc.co.uk/video/fishmovies.htm
1 ó varios trofontes en o bajo la epidermis.
Ø hasta 1-1,5 mm
Trofozoíto o trofonte
Teronte 30 min - 2 días
30-50 μm
Tras 7-8 h.
se forman
256-1024
tomites
Tomites
CI, cilios;
CV, vacuola contráctil;
CW, pared quística en el fondo del
estanque;
CWS, pared quística en la piel;
CY, citostoma;
EN, teronte en o bajo epidermis;
LC, cilio terminal largo;
MA, macronúcleo;
MI, micronúcleo;
OP, apertura por ruptura de CW;
Tomonte
1 hora
Fondo del estanque, lecho, ..
Ichthyophthirius multifiliis,
agente etiológico de la
enfermedad del punto blanco
(ich)
Sintomatología
• Presencia de puntos blancos a
modo de pústulas (1 mm) por
la superficie del pez (1º aletas,
2º resto cuerpo, 3º opérculos y
branquias, 4º muerte). El
parásito puede atravesar la
epidermis pero no la lámina
basal (no alcanza la dermis).
• Tendencia a rascarse contra
objetos.
• Natación errática.
• Aletas plegadas.
Fuentes: http://www.alaquairum.net/enfermedad_del_punto_blanco.htm (foto superior)
http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol3issue4.htm (foto inferiro)
Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de
la enfermedad del punto blanco (ich)
Diagnóstico
• Síntomas clínicos (puntos
blancos, ...)
• Observación de los protozoos
en frotis del contenido de un
quiste.
Fuente: http://www.alaquairum.net/enfermedad_del_punto_blanco.htm
Ichthyophthirius multifiliis. Trofozoítos con macronúcleo o micronúcleo visibles en secciones de tejido (izquierda) y agallas (derecha) de un pez.
Fuente: http://www.cvm.okstate.edu/~users/jcfox/htdocs/clinpara/lst11_20.htm#img20
Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de
la enfermedad del punto blanco (ich)
Tratamiento
En baños (tiempo según
•
•
producto).
Quinina o tripaflavina contra la
fase tomite/teronte.
Formalina, azul de metileno,
cloramina o verde malaquita para
las fases tomonte y trofonte
(trofozoíto).
Prevención y control
•
•
•
•
Tras la freza separar los adultos de
los tanques de desove (para evitar
que si hay adultos infectados
contaminen el tanque).
Tras 5-6 días llevar alevines a los
tanques de engorde (antes que una
nuevas generaciones de parásitos
les ataquen).
Si los hay, eliminar los peces
salvajes (pueden venir infectados).
Tratamiento con radiaciones UV
del agua de los tanques (agua muy
clara y muy transparente al UV).
Prevención general en acuicultura
• Mantenimiento de unas condiciones óptimas del agua (pH,
temperatura, salinidad, materia orgánica, contaminantes
químicos o biológicos, ...).
• Limpieza exhaustiva y desinfección periódica de los
tanques
• Alimentación equilibrada y variada.
• Densidades no demasiado elevadas de peces.
• Vigilancia para la detección precoz de
infecciones e instauración inmediata
de las medidas de control.
• Evitar el estrés de los peces.
• Evitar la introducción de peces salvajes
(pueden traer infecciones).
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Parásitos en los productos de la pesca. Protozoos